| 缩略语说明 | 第1-7页 |
| 摘要 | 第7-9页 |
| ABSTRACT | 第9-11页 |
| 前言 | 第11-13页 |
| 第一章 DISS 对GLU 损伤抗调亡作用机制研究 | 第13-27页 |
| ·实验仪器设备与试剂材料 | 第13-14页 |
| ·仪器与设备 | 第13页 |
| ·试剂和材料 | 第13-14页 |
| ·细胞株 | 第14页 |
| ·SH-SY5Y 细胞的培养 | 第14-15页 |
| ·各药液的配制 | 第14页 |
| ·细胞的培养及传代 | 第14-15页 |
| ·MTT 法测定DISS 对Glu 损伤的百分存活率 | 第15页 |
| ·筛选Glu 损伤最佳浓度 | 第15页 |
| ·筛选Glu 损伤时间 | 第15页 |
| ·细胞形态观察 | 第15页 |
| ·DISS 对Glu 损伤的细胞存活率的影响 | 第15页 |
| ·细胞培养基中LDH 含量测定 | 第15-16页 |
| ·DISS 对Glu 损伤细胞周期的改变 | 第16页 |
| ·Real-time PCR 检测bax，bcl-2 mRNA 表达改变 | 第16-18页 |
| ·细胞总RNA 的提取 | 第16-17页 |
| ·RNA 纯度及浓度测定 | 第17页 |
| ·RNA 逆转录成cDNA | 第17页 |
| ·Real-time PCR 扩增反应 | 第17-18页 |
| ·统计学方法 | 第18页 |
| ·结果 | 第18-26页 |
| ·Glu 最佳损伤浓度 | 第18-19页 |
| ·Glu 损伤作用时间筛选 | 第19-20页 |
| ·DISS 对Glu 损伤的细胞形态的改变 | 第20-21页 |
| ·DISS 对Glu 损伤的细胞存活率的改变 | 第21-22页 |
| ·DISS 对Glu 损伤细胞模型LDH 活性的影响 | 第22页 |
| ·流式检测DISS 对细胞调亡的保护作用 | 第22-23页 |
| ·DISS 对bax,bcl-2 mRNA 表达的影响 | 第23-26页 |
| ·讨论 | 第26-27页 |
| 第二章 DISS 对氧化损伤细胞的保护作用 | 第27-34页 |
| ·实验试剂及仪器 | 第27页 |
| ·细胞培养方法 | 第27页 |
| ·筛选H_2O_2 最佳损伤浓度 | 第27页 |
| ·DISS 对H_2O_2 损伤的保护作用细胞存活率的影响 | 第27页 |
| ·细胞内SOD，MDA，CAT，GSH-PX 各指标的测定 | 第27-30页 |
| ·SOD 含量的测定 | 第27-28页 |
| ·MDA 含量的测定 | 第28-29页 |
| ·CAT 含量的测定 | 第29页 |
| ·GSH-PX 的测定 | 第29-30页 |
| ·统计学方法 | 第30页 |
| ·结果 | 第30-33页 |
| ·不同时间和浓度的H_2O_2 损伤条件的筛选 | 第30-31页 |
| ·DISS 对H_2O_2 损伤的细胞存活率的改变 | 第31-32页 |
| ·DISS 对细胞内氧化应激各项指标的影响 | 第32-33页 |
| ·讨论 | 第33-34页 |
| 第三章 DISDISS 保护作用相关机制初步研究 | 第34-41页 |
| ·实验仪器设备与试剂材料 | 第35页 |
| ·Western-blot 相关试剂 | 第35页 |
| ·仪器 | 第35页 |
| ·蛋白提取及浓度测定 | 第35-36页 |
| ·Western-blot 过程 | 第36-38页 |
| ·所需准备试剂 | 第36-37页 |
| ·SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳过程 | 第37页 |
| ·转膜 | 第37-38页 |
| ·抗原抗体结合反应 | 第38页 |
| ·化学发光 | 第38页 |
| ·凝胶图象分析 | 第38页 |
| ·结果 | 第38-40页 |
| ·讨论 | 第40-41页 |
| 第四章 结论 | 第41-42页 |
| 参考文献 | 第42-44页 |
| 文献综述 | 第44-50页 |
| 参考文献 | 第48-50页 |
| 个人简历 | 第50-51页 |
| 致谢 | 第51页 |
