| 致谢 | 第1-9页 |
| 摘要 | 第9-10页 |
| 1 文献综述 | 第10-20页 |
| ·杂交小麦的研究进展 | 第10-13页 |
| ·国内外杂交小麦的研究概况 | 第10-11页 |
| ·小麦杂种优势利用的研究进展 | 第11-13页 |
| ·小麦细胞质雄性不育的研究进展 | 第11页 |
| ·核基因雄性不育的研究进展 | 第11-12页 |
| ·基因工程小麦雄性不育的研究进展 | 第12页 |
| ·化学杂交剂诱导小麦雄性不育研究进展 | 第12-13页 |
| ·光温敏感型雄性不育的研究进展 | 第13页 |
| ·K型小麦雄性不育系的研究进展 | 第13-15页 |
| ·K型小麦雄性不育系的来源及特点 | 第13-14页 |
| ·K型细胞质效应 | 第14页 |
| ·小麦K型雄性不育系的杂种优势表现 | 第14-15页 |
| ·小麦K型不育系的易恢性及育性恢复的稳定性 | 第15页 |
| ·小麦K型雄性不育系育性恢复机理的研究 | 第15-16页 |
| ·小麦K型雄性不育系育性恢复机理的研究 | 第15-16页 |
| ·分子标记在杂交小麦研究中的应用 | 第16-20页 |
| ·分子标记技术的原理及遗传特点 | 第16页 |
| ·分子标记技术的类型 | 第16-17页 |
| ·非PCR类分子标记 | 第16页 |
| ·以PCR为核心的引物技术 | 第16-17页 |
| ·位点标定PCR类分子标记 | 第17页 |
| ·分子标记技术在杂交小麦研究中的应用 | 第17-20页 |
| ·不育基因的定位 | 第17-18页 |
| ·恢复基因的定位 | 第18-19页 |
| ·细胞质雄性不育(CMS)机理的研究 | 第19-20页 |
| 2 引言 | 第20-21页 |
| 3 材料与方法 | 第21-25页 |
| ·试验材料 | 第21页 |
| ·田间调查和育性统计 | 第21页 |
| ·观察测定方法利用与两个恢复基因紧密连锁的SSR标记分析F2群体单株的基因型 | 第21-25页 |
| ·选用群体 | 第21页 |
| ·DNA的提取及纯化 | 第21-22页 |
| ·SSR法分析 | 第22-24页 |
| ·SSR引物 | 第22页 |
| ·PCR反应体系 | 第22页 |
| ·PCR反应程序 | 第22页 |
| ·扩增产物电泳检测 | 第22-23页 |
| ·扩增产物的银染检测 | 第23-24页 |
| ·带型统计 | 第24-25页 |
| 4 结果与分析 | 第25-33页 |
| ·F2代单株恢复基因的组成分析 | 第25-27页 |
| ·回交群体的育性 | 第25页 |
| ·F2代单株恢复基因的组成分析 | 第25-27页 |
| ·小麦K型雄性不育系两个恢复基因的效应分析 | 第27-33页 |
| ·回交群体的恢复基因组成 | 第27页 |
| ·恢复基因Rf1的效应分析 | 第27-29页 |
| ·正常水份条件下恢复基因Rf1的效应分析 | 第28页 |
| ·干旱条件下恢复基因Rf1的效应分析 | 第28-29页 |
| ·两种条件下恢复基因Rf1的效应比较 | 第29页 |
| ·恢复基因Rf2的效应分析 | 第29-30页 |
| ·正常水份条件下恢复基因Rf2的效应分析 | 第29页 |
| ·干旱条件下恢复基因Rf2的效应分析 | 第29-30页 |
| ·两种条件下恢复基因Rf2的效应比较 | 第30页 |
| ·同时携带恢复基因Rf1和Rf2的效应分析 | 第30-32页 |
| ·正常水份条件下同时携带恢复基因Rf1和Rf2的效应分析 | 第30-31页 |
| ·干旱条件下同时携带恢复基因Rf1和Rf2的效应分析 | 第31页 |
| ·两种条件下同时携带恢复基因Rf1和Rf2的效应比较 | 第31-32页 |
| ·恢复基因Rf1和Rf2的效应比较 | 第32页 |
| ·携带双恢复基因和单恢复基因的效应比较 | 第32-33页 |
| 5 结论与讨论 | 第33-35页 |
| ·小麦K型雄性不育系育性恢复基因的遗传分析 | 第33页 |
| ·关于实验群体选择的思考 | 第33页 |
| ·两个恢复基因的效应分析 | 第33-34页 |
| ·利用SSR分子标记辅助选择育种 | 第34页 |
| ·高恢复力的恢复系选育及今后工作的展望 | 第34-35页 |
| 参考文献 | 第35-39页 |
| 英文摘要 | 第39-40页 |
