中文摘要 | 第1-9页 |
英文摘要 | 第9-12页 |
前言 | 第12-15页 |
第一部分:岷江柏的细胞学研究 | 第15-37页 |
一、引言 | 第15页 |
二、实验材料 | 第15页 |
三、实验方法 | 第15-19页 |
·基础核型分析 | 第15-16页 |
·银染 | 第16页 |
·荧光分带 | 第16-17页 |
·荧光原位杂交 | 第17-19页 |
·材料 | 第17页 |
·实验方法 | 第17-19页 |
·探针DNA的提取 | 第17页 |
·染色体制片 | 第17页 |
·探针的制备 | 第17-18页 |
·变性和杂交 | 第18页 |
·洗脱和信号检测 | 第18页 |
·观察及摄影 | 第18-19页 |
四、实验结果 | 第19-21页 |
·基本核型 | 第19页 |
·银染结果 | 第19页 |
·DAPI荧光分带 | 第19-21页 |
五、分析与讨论 | 第21-26页 |
·基本核型 | 第21-22页 |
·DAPI荧光分带 | 第22-23页 |
·有关核仁组织区的分布和其相关的讨论 | 第23-24页 |
·影响原位杂交实验成功与否的一些因素的探讨 | 第24-26页 |
·供原位杂交使用的染色体制片 | 第24页 |
·变性条件的筛选 | 第24-25页 |
·杂交温育的温度和时间 | 第25页 |
·洗脱时的注意事项 | 第25页 |
·防止信号衰减的措施 | 第25页 |
·反应可靠性的控制 | 第25-26页 |
参考文献 | 第26-37页 |
第二部分 中国柏木属(Cupressus L.)植物的petG-trnP序列分析及其系统学意义 | 第37-52页 |
一、引言 | 第37-38页 |
二、材料和方法 | 第38-41页 |
·材料来源 | 第38页 |
·总DNA提取 | 第38-39页 |
·总DNA浓度测定 | 第39页 |
·引物设计及选择 | 第39页 |
·petG-trnP序列的扩增和纯化 | 第39-40页 |
·测序反应及检测 | 第40页 |
·序列分析及系统树的构建 | 第40-41页 |
三、结果 | 第41-46页 |
四、分析和讨论 | 第46-49页 |
·petG-trnP序列在柏木属系统学研究中的应用 | 第46-47页 |
·中国柏木属植物的系统关系 | 第47页 |
·柏木的系统位置 | 第47页 |
·柏木和干香柏的关系 | 第47-48页 |
·巨柏与藏柏的关系 | 第48页 |
·Ch. nootkatensis的系统位置 | 第48页 |
·petG-trnP序列聚类结果与细胞地理学的比较分析 | 第48-49页 |
参考文献 | 第49-52页 |
第三部分:植物分子系统学综述 | 第52-70页 |
1 用于植物分子系统学研究的主要基因种类 | 第52-61页 |
·叶绿体基因组(cpDNA) | 第52-57页 |
·编码基因 | 第53-55页 |
·rbcL基因 | 第53-54页 |
·matK基因 | 第54-55页 |
·ndh基因 | 第55页 |
·atpB基因 | 第55页 |
·cpDNA非编码区 | 第55-57页 |
·cpDNA内含子 | 第56页 |
·cpDNA基因间区 | 第56页 |
·TrnL-F非编码区 | 第56-57页 |
·trnL—trnF间区 | 第57页 |
·核基因组 | 第57-61页 |
·核糖体DNA(nrDNA) | 第58-61页 |
·18S rDNA基因 | 第58-59页 |
·乙醇脱氢酶基因(alcohol dehydrogenase, Adh) | 第59-60页 |
·核糖体内转录间隔区(internal transcribed spacer, ITS) | 第60页 |
·ETS(外转录间隔区)及IGS(基因间区) | 第60-61页 |
·线粒体基因组(mtDNA) | 第61页 |
2 系统发育树重建 | 第61-67页 |
·离散特征法 | 第61-63页 |
·最大简约法(MP) | 第62-63页 |
·最大似然法(ML) | 第63页 |
·距离依靠法 | 第63-65页 |
·UPGMA法 | 第64页 |
·邻接法(NJ法) | 第64-65页 |
·对系统发育树进行评估 | 第65-67页 |
参考文献 | 第67-70页 |
致谢 | 第70-71页 |
声明 | 第71页 |