| 主要英文缩写 | 第1-6页 |
| 中文摘要 | 第6-8页 |
| 英文摘要 | 第8-11页 |
| Ⅰ 前言 | 第11-25页 |
| 1 植物激素脱落酸的信号转导 | 第11-13页 |
| 1．1 ABA结合蛋白 | 第11-12页 |
| 1．2 胞内信号转导的途径 | 第12-13页 |
| 1．3 ABA诱导的基因表达 | 第13页 |
| 2 植物细胞H_2O_2的产生及植物体内一种可能的信使分子 | 第13-20页 |
| 2．1 H_2O_2的产生和清除机制 | 第14-15页 |
| 2．2 H_2O_2和气孔运动的关系 | 第15-16页 |
| 2．3 H_2O_2在植物与病原菌互作中的信号转导 | 第16-17页 |
| 2．4 H_2O_2与基因水平上的转录 | 第17-19页 |
| 2．5 H_2O_2的信号转导机制 | 第19-20页 |
| 3 保卫细胞信号转导中的钙信使 | 第20-22页 |
| 4 展望 | 第22-23页 |
| 5 选题意义及依据 | 第23-25页 |
| Ⅱ 实验研究部分 | 第25-54页 |
| 1 ABA诱导蚕豆气孔保卫细胞H_2O_2的产生 | 第25-37页 |
| 1．1 材料和方法 | 第25-27页 |
| 1．1．1 材料 | 第26页 |
| 1．1．2 表皮条的剥离 | 第26页 |
| 1．1．3 预处理和镜检 | 第26-27页 |
| 1．1．4 表皮条的HPTS荧光的观测 | 第27页 |
| 1．1．5 保卫细胞荧光的激光扫描共聚焦显微图像的观察与记录 | 第27页 |
| 1．1．6 表皮缓冲液吸光度的动力学检测 | 第27页 |
| 1．2 实验结果 | 第27-34页 |
| 1．2．1 外加H_2O_2对HPTS荧光的影响 | 第28页 |
| 1．2．2 表皮组织中HPTS荧光猝灭幅度随ABA浓度的变化 | 第28页 |
| 1．2．3 蚕豆保卫细胞的荧光图象及其随时间变化的荧光强度分析 | 第28页 |
| 1．2．4 过氧化氢酶对ABA引起的HPTS荧光猝灭的影响 | 第28-29页 |
| 1．2．5 CAT对ABA引起吸光度变化的影响 | 第29-34页 |
| 1．2．6 预处理表皮条的细胞活性变化 | 第34页 |
| 1．3 讨论 | 第34-37页 |
| 2 NADPH氧化酶可能参与了ABA诱导蚕豆气孔保卫细胞运动 | 第37-44页 |
| 2．1 材料和方法 | 第38页 |
| 2．1．1 材料 | 第38页 |
| 2．1．2 表皮HPTS荧光的观测 | 第38页 |
| 2．1．2 表皮气孔开度的观测 | 第38页 |
| 2．2 结果与分析 | 第38-42页 |
| 2．2．1 外加H_2O_2、ABA和DPI对HPTS荧光的影响 | 第38-39页 |
| 2．2．2 H_2O_2、Vc、CAT、和DPI对ABA诱导气孔关闭的影响 | 第39-42页 |
| 2．3 讨论 | 第42-44页 |
| 3 H_2O_2对ABA诱导蚕豆气孔保卫细胞胞质钙的影响 | 第44-54页 |
| 3．1 材料和方法 | 第44-47页 |
| 3．1．1 材料 | 第44页 |
| 3．1．2 分离蚕豆保卫细胞的原生质体 | 第44-45页 |
| 3．1．3 原生质体活力检测 | 第45页 |
| 3．1．4 电极制作 | 第45页 |
| 3．1．5 全细胞记录 | 第45-46页 |
| 3．1．6 胞质Ca~（2+）的测定 | 第46页 |
| 3．1．7 荧光图像记录 | 第46页 |
| 3．1．8 试剂 | 第46-47页 |
| 3．2 结果 | 第47-52页 |
| 3．2．1 保卫细胞原生质体内向Ca~（2+）离子电流的特性 | 第47-48页 |
| 3．2．2 外源ABA和H_2O_2对质膜内向Ca~（2+）离子通道的影响 | 第48-49页 |
| 3．2．3 CAT、DPI和EGTA对ABA诱发的质膜Ca~（2+）离子通道的影响 | 第49页 |
| 3．2．4 ABA和H_2O_2对胞质Ca~（2+）的影响 | 第49-52页 |
| 3．3 讨论 | 第52-54页 |
| Ⅲ 结论 | 第54-55页 |
| 参考文献 | 第55-64页 |
| 致谢 | 第64页 |
