| 英文缩写列表 | 第1-6页 |
| 中文摘要 | 第6-7页 |
| 1． 引言 | 第7-13页 |
| 1．1 HMG蛋白质家族的分类 | 第7页 |
| 1．2 HMG-14／17与HMG-I／Y在细胞中的功能 | 第7页 |
| 1．3 HMG-1／2蛋白质家族的分类 | 第7-9页 |
| 1．3．1 HMG蛋白质的结构及每部分的功能 | 第8-9页 |
| 1．3．2 HMG蛋白质的DNA结合域的分类 | 第9页 |
| 1．4 HMG-1／2蛋白质家族的结合特性 | 第9-11页 |
| 1．5 HMG-1／2蛋白质家族及HMG1的功能 | 第11-12页 |
| 1．6 本实验的研究目的意义 | 第12-13页 |
| 2． 实验材料及方案 | 第13-25页 |
| 2．1 实验材料 | 第13-14页 |
| 2．1．1 植物材料 | 第13页 |
| 2．1．2 材料处理 | 第13页 |
| 2．1．3 菌种与质粒 | 第13页 |
| 2．1．4 酶及生化试剂 | 第13-14页 |
| 2．1．5 PCR引物 | 第14页 |
| 2．2 实验方法 | 第14-25页 |
| 2．2．1 CTAB法提总RNA | 第14-16页 |
| 2．2．2 cDNA的合成（promega AMV） | 第16-6页 |
| 2．2．3 目的基因cDNA片段的分离 | 第6-20页 |
| 2．2．3．1 PCR扩增 | 第16-17页 |
| 2．2．3．2 目的DNA片段的回收纯化 | 第17-18页 |
| 2．2．3．3 连接 | 第18页 |
| 2．2．3．4 感受态细胞的制备 | 第18-19页 |
| 2．2．3．5 转化 | 第19页 |
| 2．2．3．6 碱法小量提取质粒DNA | 第19-20页 |
| 2．2．3．7 酶切鉴定 | 第20页 |
| 2．2．3．8 测序 | 第20页 |
| 2．2．4 目的基因3’端片段的分离 | 第20-21页 |
| 2．2．5 目的基因片段5’端的克隆 | 第21页 |
| 2．2．6 Southern杂交分析 | 第21-23页 |
| 2．2．6．1 基因组DNA的提取 | 第21-22页 |
| 2．2．6．2 用于Southern杂交的DNA大量酶切 | 第22-23页 |
| 2．2．6．3 用碱性缓冲液在尼龙膜上进行Southern转膜 | 第23页 |
| 2．2．7 Northern杂交分析 | 第23-25页 |
| 2．2．7．1 探针合成 | 第23页 |
| 2．2．7．2 RNA甲醛变性电泳 | 第23页 |
| 2．2．7．3 转膜 | 第23-24页 |
| 2．2．7．4 杂交分析 | 第24-25页 |
| 3． 结果与分析 | 第25-34页 |
| 3．1 裂叶牵牛HMG2 cDNA克隆及序列 | 第25-26页 |
| 3．2 HMG2在裂叶牵牛中是单拷贝基因（Southern） | 第26-27页 |
| 3．3 HMG2在裂叶牵牛中的组织特异性表达（Northern） | 第27页 |
| 3．4 光周期对HMG2基因表达的影响（Northern） | 第27-28页 |
| 3．5 玉米、黄瓜HMG基因的克隆及表达分析（Northern杂交图 根、茎、叶、花序） | 第28-32页 |
| 3．6 黄瓜不同发育时期HMG表达组织特异性 | 第32-34页 |
| 4． 讨论 | 第34-38页 |
| 4．1 比较牵牛花HMG1与HMG2的序列，初步判定HMG2可能在牵牛花中起持家基因的作用 | 第34页 |
| 4．2 在黄瓜、玉米、裂叶牵牛中是否有其它的HMG蛋白质家族也起作用及HMG蛋白质的精细功能 | 第34-35页 |
| 4．3 通过研究红光对植物开花的影响，是证明光敏色素与植物开花功有关 | 第35页 |
| 4．4 黄瓜、玉米、牵牛花HMG-box序列的比 | 第35-36页 |
| 4．5 HMG蛋白质与植物开花 | 第36-38页 |
| 5． 结论 | 第38-39页 |
| 6． 参考文献 | 第39-43页 |
| 7． ABSTRACT | 第43-44页 |
| 致谢 | 第44页 |
