1 摘要 | 第1-9页 |
1.1 中文摘要 | 第3-5页 |
1.2 英文摘要 | 第5-8页 |
1.3 主要英文缩写词表 | 第8-9页 |
2 前言 | 第9-13页 |
2.1 肌肉活动及其生理生化过程 | 第9-10页 |
2.2 肌肉活动对SR Ca~(2+)转运影响的研究现状 | 第10-11页 |
2.3 立题依据 | 第11-13页 |
3 文献综述---骨骼肌疲劳的细胞内Ca~(2+)机制及其研究进展 | 第13-28页 |
3.1 参与细胞内Ca~(2+)调节的成分 | 第13-18页 |
3.2 骨骼肌疲劳的细胞Ca~(2+)机制 | 第18-28页 |
4 动物实验研究 | 第28-82页 |
4.1 材料与方法 | 第28-39页 |
4.1.1 动物分组、训练及其力竭 | 第28页 |
4.1.2 大鼠宰杀和取样 | 第28-29页 |
4.1.3 指标检测及其方法 | 第29-38页 |
4.1.4 主要仪器和试剂 | 第38页 |
4.1.5 统计分析 | 第38-39页 |
4.2 结果 | 第39-63页 |
4.2.1 大鼠体重及生长曲线 | 第39页 |
4.2.2 大鼠力竭游泳时间 | 第39-40页 |
4.2.3 血液生化指标 | 第40-42页 |
4.2.4 股四头肌CaM和cAMP含量 | 第42-44页 |
4.2.5 骨骼肌SR Ca~(2+)转运活性 | 第44-56页 |
4.2.6 腓肠肌SR Ca~(2+)-ATPase(Ca~(2+)泵)及Ryanodine受体(C~(2+)释放通道)的基因表达 | 第56-58页 |
4.2.7 指标间的相关性 | 第58-63页 |
4.3 分析与讨论 | 第63-81页 |
4.3.1 游泳耐力训练可降低大鼠体重 | 第63页 |
4.3.2 训练后大鼠游泳能力增强与骨骼肌SR Ca~(2+)转运活性增加有关 | 第63-64页 |
4.3.3 血总睾酮和CK活力……可作为训练和机能状态的监测指标 | 第64-69页 |
4.3.4 红细胞ATPase活力……运动员生化监测的候选指标 | 第69-71页 |
4.3.5 肌肉CaM和cAMP可能对SR Ca~(2+)转运活性起调节作用 | 第71-73页 |
4.3.6 训练和力竭游泳增强骨骼肌SR Ca~(2+)转运活性 | 第73-80页 |
4.3.7 可能反映骨骼肌SR Ca~(2+)转运活性的血液生化指标 | 第80-81页 |
4.4 结论 | 第81-82页 |
参考文献 | 第82-92页 |
致谢 | 第92页 |