中文摘要 | 第1-12页 |
ABSTRACT | 第12-14页 |
研究一 人脂肪干细胞成骨分化过程中 PRP 的作用及其与纳米羟基磷灰石/胶原生物相容性的研究 | 第14-46页 |
1 前言 | 第14-16页 |
2 材料和方法 | 第16-21页 |
·实验材料 | 第16页 |
·标本采集 | 第16页 |
·主要仪器和设备 | 第16-17页 |
·试剂来源及主要液体配制 | 第17-20页 |
·胎牛血清(FBS) | 第17页 |
·细胞消化液 | 第17页 |
·细胞冻存液 | 第17页 |
·0.01M pH 7.4 磷酸盐(PBS)缓冲液 | 第17-18页 |
·DMEM 培养液 | 第18页 |
·PBS | 第18页 |
·青霉素 | 第18页 |
·链霉素 | 第18页 |
·红细胞裂解液 | 第18-19页 |
·I 型胶原酶 | 第19页 |
·中性蛋白酶 | 第19页 |
·牛凝血酶的配制 | 第19页 |
·4%多聚甲醛 | 第19页 |
·枸橼酸钠抗凝剂 | 第19页 |
·瑞氏染液的配制 | 第19-20页 |
·细胞培养 | 第20-21页 |
·培养器皿的准备 | 第20页 |
·细胞复苏 | 第20页 |
·细胞培养和传代 | 第20-21页 |
·细胞冻存 | 第21页 |
3 实验方法 | 第21-24页 |
·PRP 的制备及比较 | 第21-22页 |
·传统二次离心法制备PRP(Landesber 法) | 第21页 |
·改良三次离心法制备PRP | 第21-22页 |
·统计学分析 | 第22页 |
·人 ADSCs 分离培养及鉴定 | 第22-23页 |
·人ADSCs 分离培养 | 第22页 |
·人 ADSCs 的鉴定 | 第22页 |
·人ADSCs 生长曲线测定 | 第22-23页 |
·PRP 对人 ADSCs 成骨矿化的影响 | 第23页 |
·PRP 对人 ADSCs 成骨矿化的影响 | 第23页 |
·Von Kossa 钙结节染色 | 第23页 |
·人 ADSCs 与纳米羟基磷灰石/胶原共培养 | 第23-24页 |
4 结果 | 第24-30页 |
·全血与传统二次离心法、改良三次离心法制备的PRP 中的血小板数量 | 第24页 |
·传统二次离心法、改良三次离心法制备的 PRP 相关系数的比较 | 第24-25页 |
·PRP 的制备及瑞氏染色 | 第25-26页 |
·人脂肪干细胞分离培养 | 第26-27页 |
·人 ADSCs 免疫组化鉴定 | 第27页 |
·人 ADSCs 生长曲线测定 | 第27-28页 |
·PRP 对人脂肪干细胞向成骨细胞分化的影响 | 第28-29页 |
·人脂肪干细胞与纳米羟基磷灰石/胶原共培养 | 第29-30页 |
5 讨论 | 第30-36页 |
·脂肪干细胞作为种子细胞的应用前景 | 第30-31页 |
·PRP 的概念及应用前景 | 第31-32页 |
·PRP 制作方法比较 | 第32页 |
·脂肪干细胞成骨分化过程中富血小板血浆(PRP)的作用 | 第32-33页 |
·脂肪干细胞增殖过程中富血小板血浆对其的影响 | 第33-34页 |
·人脂肪干细胞与纳米羟基磷灰石/胶原支架生物相容性 | 第34-36页 |
6 结论与展望 | 第36-38页 |
·结论 | 第36页 |
·展望 | 第36-38页 |
参考文献 | 第38-46页 |
研究二 釉基质蛋白的提取及对脂肪干细胞增殖的影响 | 第46-58页 |
1 前言 | 第46-47页 |
2 材料和方法 | 第47页 |
·实验材料 | 第47页 |
·标本采集 | 第47页 |
·主要试剂和仪器同第一部分 | 第47页 |
3 实验方法 | 第47-49页 |
·EMPs 的提取 | 第47页 |
·蛋白质聚丙酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE) | 第47-48页 |
·EMPs 对 Beagle 犬 ADSCs 增殖影响的测定 | 第48页 |
·统计学分析 | 第48-49页 |
4 结果 | 第49-51页 |
·SDS-PAGE 结果 | 第49页 |
·EMPs 对 Beagle 犬 ADSCs 增殖的影响 | 第49-51页 |
5 讨论 | 第51-53页 |
·EMPs | 第51-52页 |
·EMPs 促进细胞增殖的作用 | 第52-53页 |
6 结论与展望 | 第53-55页 |
·结论 | 第53页 |
·展望 | 第53-55页 |
参考文献 | 第55-58页 |
附录 | 第58-59页 |
致谢 | 第59-60页 |
综述 | 第60-72页 |
参考文献 | 第68-72页 |