| 中文摘要 | 第1-6页 |
| 英文摘要 | 第6-10页 |
| 前言 | 第10-16页 |
| 材料与方法 | 第16-26页 |
| 1 实验动物 | 第16页 |
| 2 主要试剂 | 第16-17页 |
| 3 主要仪器 | 第17页 |
| 4 主要溶液的配制 | 第17-19页 |
| ·磷酸盐缓冲液(PBS)溶液成份 | 第17-18页 |
| ·红细胞裂解液 | 第18页 |
| ·鞘液(FCM) | 第18页 |
| ·电泳缓冲液 | 第18页 |
| ·转移缓冲液 | 第18页 |
| ·10%十二烷基硫酸钠SDS溶液 | 第18-19页 |
| ·分离胶缓冲液 | 第19页 |
| ·浓缩胶缓冲 | 第19页 |
| ·封闭液(10X TBS) | 第19页 |
| 5 小鼠淋巴细胞的制备 | 第19页 |
| 6 小鼠骨髓细胞的制备 | 第19-20页 |
| 7 小鼠骨髓来源DCs的诱导 | 第20页 |
| 8 小鼠骨髓来源DCs分化和成熟的检测 | 第20-21页 |
| 9 小鼠骨髓来源DCs的体外分化诱导和MLR | 第21页 |
| 10 细胞因子检测 | 第21-23页 |
| ·ELISA检测 | 第21-23页 |
| ·Luminex~(TM)100检测 | 第23页 |
| 11 Western Blot蛋白检测(免疫印迹法) | 第23-25页 |
| ·样品制备 | 第23页 |
| ·蛋白定量 | 第23-24页 |
| ·电泳分离 | 第24页 |
| ·转膜 | 第24-25页 |
| ·封闭及抗体杂交显色 | 第25页 |
| 12 统计学处理 | 第25-26页 |
| 结果 | 第26-38页 |
| 1 Jagged-1对DCs形态的影响 | 第26-27页 |
| 2 Jagged-1对DCs分化的影响 | 第27-28页 |
| 3 Jagged-1对DCs成熟的影响 | 第28-31页 |
| 4 Jagged-1对DCs分泌细胞因子的影响 | 第31-33页 |
| 5 Jagged-1对DCs Notch通路活化的影响 | 第33-36页 |
| ·Jagged-1处理对骨髓源性DCs中NICD表达的影响 | 第33-34页 |
| ·Jagged-1处理对骨髓源性DCs中Deltex-1表达的影响 | 第34-35页 |
| ·Jagged-1处理对骨髓源性DCs中Hes-1表达的影响 | 第35-36页 |
| 6 Jagged-1对DCs刺激淋巴细胞增殖能力影响 | 第36-38页 |
| 讨论 | 第38-49页 |
| 参考文献 | 第49-54页 |
| 在学期间发表论文 | 第54-55页 |
| 致谢 | 第55-56页 |
| 英文缩略词表 | 第56页 |
