| 中文摘要 | 第1-8页 |
| Abstract | 第8-10页 |
| 1 引言 | 第10-20页 |
| ·水稻对UV-B 辐射响应的研究进展 | 第10-13页 |
| ·UV-B 辐射增强对水稻植株形态及细胞系统的影响 | 第11页 |
| ·水稻对UV-B 辐射增强的适应机制 | 第11-12页 |
| ·水稻对UV-B 辐射增强的抗性遗传特性 | 第12-13页 |
| ·水稻硅营养研究进展 | 第13-15页 |
| ·水稻硅营养及其抗UV-B | 第15页 |
| ·水稻Low silicon rice 基因的研究 | 第15-18页 |
| ·基因过量表达的研究 | 第18-19页 |
| ·本研究的内容与特点 | 第19-20页 |
| 2 材料与方法 | 第20-30页 |
| ·材料 | 第20页 |
| ·供试材料 | 第20页 |
| ·实验试剂 | 第20页 |
| ·方法 | 第20-30页 |
| ·供式材料的种植 | 第20页 |
| ·Lsi1 全长ORF 的克隆 | 第20-26页 |
| ·总RNA 提取 | 第20-21页 |
| ·痕量基因组DNA 的DNase 处理 | 第21页 |
| ·RNA 纯度和完整性的检测 | 第21-22页 |
| ·cDNA 第一链的合成 | 第22页 |
| ·Lsi1 基因的克隆 | 第22-23页 |
| ·胶回收试剂盒回收目的片段（操作见试剂盒说明书） | 第23页 |
| ·目的片段连接到pMD18-T Vector | 第23页 |
| ·DH5α感受态细胞的制备方法 | 第23-24页 |
| ·将连接好的产物转化到大肠杆菌DH5α的感受态细胞中 | 第24页 |
| ·重组子的鉴定 | 第24-26页 |
| ·Lsi1-ubiquitin1301 过量表达载体的构建 | 第26-27页 |
| ·Lsi1-ubiquitin1301 过量表达转基因植株的获得 | 第27-28页 |
| ·根癌农杆菌EHA105 感受态细胞的制备 | 第27页 |
| ·液氮速冻法将重组质粒Lsi1-ubiquitin1301 转化感受态根癌农杆菌EHA105 | 第27页 |
| ·水稻转基因 | 第27-28页 |
| ·阳性Lsi1-ubiquitin1301 过量表达转基因植株的筛选 | 第28页 |
| ·GUS 染色 | 第28页 |
| ·半定量RT-PCR 检测Lsi1 基因的表达量 | 第28页 |
| ·转基因水稻UV-B 处理 | 第28-29页 |
| ·半定量 RT-PCR 检测转基因水稻及其野生型苯丙氨酸解氨酶(PAL)基因与光复活酶（Photolyase）基因的表达量 | 第29页 |
| ·总酚测量 | 第29页 |
| ·总黄酮测量 | 第29-30页 |
| 3 结果与分析 | 第30-37页 |
| ·Lsi1 全长ORF 的克隆 | 第30-31页 |
| ·Lsi1-ubiquitin1301 过量表达载体的构建 | 第31-32页 |
| ·Lsi1 基因过量表达转基因植株的获得 | 第32-37页 |
| ·Lsi1-Ubiquitin-1301 的遗传转化 | 第32-33页 |
| ·转基因植株的GUS 染色结果 | 第33页 |
| ·转基因水稻及野生型水稻根系Lsi1 基因表达量 | 第33-34页 |
| ·UV-B 辐射后，Lsi1 基因过量表达水稻与野生型水稻苯丙氨酸解氨酶（PAL）基因及光复活酶（Photolyase）基因的表达变化 | 第34-35页 |
| ·总酚含量测定结果 | 第35-36页 |
| ·总黄酮含量测定结果 | 第36-37页 |
| 4 结论与讨论 | 第37-40页 |
| 5 问题与展望 | 第40-41页 |
| ·本研究的不足之处 | 第40页 |
| ·进一步研究的设想 | 第40-41页 |
| 6 参考文献 | 第41-49页 |
| 致谢 | 第49页 |
