| 摘要 | 第4-7页 |
| abstract | 第7-9页 |
| 前言 | 第12-17页 |
| 参考文献 | 第14-17页 |
| 第一部分 流出道侧静脉内膜中平滑肌样细胞在自体动静脉内瘘失功中的作用及细胞炎症因子在增生静脉内膜中的表达情况 | 第17-36页 |
| 引言 | 第17-20页 |
| 实验材料和方法 | 第20-25页 |
| 1、主要实验仪器 | 第20页 |
| 2、主要实验试剂 | 第20-21页 |
| 3、动静脉内瘘(AVF)失功患者的临床资料 | 第21页 |
| 4、人体标本获取过程 | 第21页 |
| 5、病理切片制作 | 第21-22页 |
| 6、免疫组化染色 | 第22页 |
| 7、PCR实验方法 | 第22-24页 |
| 8、Western blot实验方法 | 第24-25页 |
| 9、统计学分析 | 第25页 |
| 结果 | 第25-28页 |
| 讨论 | 第28-30页 |
| 结论 | 第30-31页 |
| 参考文献 | 第31-36页 |
| 第二部分 MICRORNA-155 通过对平滑肌样细胞表达RANTES的调控促进动静脉内瘘的静脉内膜增生 | 第36-60页 |
| 引言 | 第36-38页 |
| 实验材料和方法 | 第38-41页 |
| 1、主要实验器材 | 第38页 |
| 2、主要实验试剂 | 第38页 |
| 3、动脉模型的建立 | 第38-39页 |
| 4、动物组织标本的获取 | 第39-40页 |
| 5、人体标本的获取及处理方法、动物标本病理切片制作及免疫组化染色 | 第40页 |
| 6、PCR实验方法、步骤及引物设计 | 第40页 |
| 7、Western blot实验方法及步骤 | 第40页 |
| 8、平滑肌样细胞的分离与培养 | 第40页 |
| 9、酶联免疫吸附剂测定 | 第40-41页 |
| 10、统计学分析 | 第41页 |
| 结果 | 第41-52页 |
| 讨论 | 第52-55页 |
| 结论 | 第55页 |
| 参考文献 | 第55-60页 |
| 第三部分 AVF中静脉外膜中的平滑肌祖细胞可内迁、分化为内膜中的平滑肌样细胞 | 第60-82页 |
| 引言 | 第60-63页 |
| 实验材料与方法 | 第63-67页 |
| 1、主要实验仪器 | 第63页 |
| 2、主要试剂 | 第63-64页 |
| 3、实验动物 | 第64页 |
| 4、自体动静脉内瘘动物模型的建立 | 第64页 |
| 5、动物模型组织标本的处理 | 第64-65页 |
| 6、AVF静脉组织切片免疫荧光染色 | 第65页 |
| 7、细胞免疫荧光染色 | 第65页 |
| 8、骨髓移植与流式细胞分析和分选 | 第65-66页 |
| 9、平滑肌祖细胞的分离与培养 | 第66-67页 |
| 10、Transwell迁移实验 | 第67页 |
| 11、PCR、Western blot及ELISA的实验方法及步骤 | 第67页 |
| 12、数据统计 | 第67页 |
| 结果 | 第67-72页 |
| 讨论 | 第72-76页 |
| 结论 | 第76-77页 |
| 参考文献 | 第77-82页 |
| 全文结论 | 第82-83页 |
| 本研究的特点与创新 | 第83-84页 |
| 综述 流出道侧静脉新内膜增生机制及其在自体动静脉内瘘狭窄失功中的作用 | 第84-105页 |
| 参考文献 | 第96-105页 |
| 中英文缩略词表 | 第105-106页 |
| 攻读博士学位期间发表的论文及获得的奖项 | 第106-107页 |
| 致谢 | 第107-108页 |
