| 摘要 | 第5-7页 |
| abstract | 第7-8页 |
| 中英文缩略词 | 第13-18页 |
| 第一章 绪论 | 第18-28页 |
| 1.1 自身免疫性甲状腺疾病 | 第18页 |
| 1.2 HT病 | 第18-20页 |
| 1.2.1 概述 | 第18-19页 |
| 1.2.2 流行病学 | 第19页 |
| 1.2.3 免疫病理特征 | 第19页 |
| 1.2.4 发病机制 | 第19-20页 |
| 1.3 细胞因子 | 第20-23页 |
| 1.3.1 概述 | 第20-21页 |
| 1.3.2 Th1/Th2细胞因子与AITD | 第21页 |
| 1.3.3 IFN-γ | 第21-22页 |
| 1.3.4 .IL-1β | 第22页 |
| 1.3.5 IFN-γ、IL-1β与HT | 第22-23页 |
| 1.4 细胞程序性死亡 | 第23-25页 |
| 1.4.1 细胞凋亡 | 第23-24页 |
| 1.4.2 自噬 | 第24-25页 |
| 1.4.3 自噬、凋亡和HT | 第25页 |
| 1.5 Caveolin-1 | 第25-27页 |
| 1.5.1 Caveolin-1概述 | 第25-26页 |
| 1.5.2 Caveolin-1与凋亡 | 第26页 |
| 1.5.3 Caveolin-1与自噬 | 第26-27页 |
| 1.5.4 Caveolin-1与HT | 第27页 |
| 1.6 小结 | 第27-28页 |
| 第二章 研究目的、内容、方法、意义及实验方案设计 | 第28-31页 |
| 2.1 研究目的 | 第28页 |
| 2.2 研究内容 | 第28页 |
| 2.3 研究方法及技术 | 第28-29页 |
| 2.4 研究意义 | 第29页 |
| 2.5 实验方案设计 | 第29-31页 |
| 2.5.1 检测HT患者甲状腺组织与正常甲状腺组织中IL-1β、IFN-γ及Caveolin-1表达情况 | 第29页 |
| 2.5.2 IL-1β、IFN-γ对甲状腺上皮细胞Caveolin-1和LC3B-II蛋白的影响,以及干扰Caveolin-1后细胞中LC3B-II的表达变化 | 第29-31页 |
| 第三章 实验材料与方法 | 第31-53页 |
| 3.1 临床标本收集 | 第31页 |
| 3.2 主要试剂和材料 | 第31-38页 |
| 3.2.1 细胞系 | 第31页 |
| 3.2.2 主要试剂 | 第31-35页 |
| 3.2.3 主要仪器设备和耗材 | 第35-38页 |
| 3.3 实验方法 | 第38-53页 |
| 3.3.1 甲状腺上皮细胞Nthy-ori3-1的培养 | 第38-40页 |
| 3.3.2 免疫组织化学染色 | 第40-41页 |
| 3.3.3 细胞免疫荧光染色 | 第41-42页 |
| 3.3.4 瞬时转染 | 第42-43页 |
| 3.3.5 提取RNA(Trizol法提取) | 第43-44页 |
| 3.3.6 逆转录PCR | 第44-45页 |
| 3.3.7 实时荧光定量PCR | 第45-46页 |
| 3.3.8 蛋白质印迹 | 第46-51页 |
| 3.3.9 统计学分析 | 第51-53页 |
| 第四章 实验结果 | 第53-58页 |
| 4.1 HT患者组织中IL-1β和IFN-γ高表达而Caveolin-1低表达 | 第53-54页 |
| 4.2 IL-1β和IFN-γ抑制甲状腺上皮细胞Caveolin-1和LC3B-II表达 | 第54-56页 |
| 4.3 siCaveolin-1降低甲状腺上皮细胞Caveolin-1表达 | 第56页 |
| 4.4 干扰Caveolin-1后甲状腺上皮细胞LC3B-II表达下降 | 第56-58页 |
| 第五章 讨论 | 第58-61页 |
| 第六章 主要结论及展望 | 第61-62页 |
| 6.1 主要结论 | 第61页 |
| 6.2 展望 | 第61-62页 |
| 参考文献 | 第62-78页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第78-80页 |
| 致谢 | 第80-81页 |
