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苏子联合强力霉素抑制奶牛源金葡菌生物被膜的调控机制

致谢第4-5页
摘要第5-6页
Abstract第6-7页
英文缩写词表第12-13页
1 文献综述第13-21页
    1.1 奶牛乳房炎研究概述第13-15页
    1.2 金黄色葡萄球菌研究概述第15-16页
    1.3 生物被膜的概述第16-19页
    1.4 中药研究的概述第19-21页
2 引言第21-24页
    2.1 研究目的及意义第21页
    2.2 国内外研究进展第21-22页
    2.3 研究内容和方法第22-23页
        2.3.1 金葡菌SA3分离株的药敏试验第22页
        2.3.2 不同中药醇提取物对金葡菌SA3的抑菌性检测第22页
        2.3.3 金葡菌SA3生物被膜体外成膜最佳时间第22页
        2.3.4 研究中药醇提取物、抗生素或联合对金葡菌SA3及生物被膜的影响第22页
        2.3.5 中药醇提取物、抗生素或联合对金葡菌SA3成膜基因的调控研究第22-23页
    2.4 技术路线第23-24页
3 实验材料和方法第24-37页
    3.1 主要材料第24-26页
        3.1.1 材料第24页
        3.1.2 主要试剂器材和试剂盒第24-25页
        3.1.3 培养基和试剂的配制第25-26页
    3.2 实验方法第26-37页
        3.2.1 金葡菌SA3革兰氏染色第26页
        3.2.2 金葡菌SA3药敏试验第26-28页
        3.2.3 金葡菌SA3生物被膜的成膜实验第28-29页
        3.2.4 金葡菌SA3生长曲线的测定第29页
        3.2.5 金葡菌SA3成生物被膜基因的检测第29-31页
        3.2.6 激光共聚焦显微镜观察细菌加药前后成生物被膜情况第31-33页
        3.2.7 荧光定量PCR第33-37页
4 结果与分析第37-48页
    4.1 革兰氏染色第37页
    4.2 中药醇提物对金葡菌生长抑制作用第37页
    4.3 中药醇提物抑制生物被膜实验第37-38页
    4.4 二倍稀释法测定金葡菌SA3最小抑菌浓度(MIC)第38-39页
    4.5 金葡菌SA3生物被膜最佳成膜时间第39-40页
    4.6 苏子醇提物和强力霉素作用 SA3 生物被膜第40-43页
    4.7 苏子醇提物、强力霉素或联合对金葡菌SA3生长曲线的影响第43-44页
    4.8 金葡菌SA3成膜基因的检测第44-45页
    4.9 激光共聚焦显微镜观察金葡菌SA3加药前后成生物被膜情况第45-46页
        4.9.1 质粒的提取第45页
        4.9.2 金葡菌SA3电转荧光质粒后荧光显微镜观察第45页
        4.9.3 激光共聚焦显微镜观察金葡菌SA3成膜情况第45-46页
    4.10 荧光定量PCR分析苏子醇提物、强力霉素或联合作用时icaA表达量的变化第46-48页
        4.10.1 金葡菌SA3的RNA提取第46-47页
        4.10.2 荧光定量PCR对icaA转录水平的检测第47-48页
5 讨论第48-50页
    5.1 金葡菌耐药性及中药研究第48页
    5.2 金葡菌 SA3 生物被膜最适成膜时间的确立第48页
    5.3 苏子醇提物、强力霉素或联合对金葡菌 SA3 的影响第48页
    5.4 激光共聚焦显微镜观察苏子醇提物、强力霉素或联合对金葡菌SA3 的影响第48页
    5.5 金葡菌生物被膜调控基因 ica A第48-49页
    5.6 苏子醇提物、强力霉素或联合对金黄色葡萄球菌 SA3 生物被膜基因表达的调控第49-50页
6 结论第50-51页
参考文献第51-56页
作者简介第56页

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