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miR-21及NF-κB在白藜芦醇改善肺纤维化中的作用

摘要第6-9页
Abstract第9-13页
英文缩略词表第17-19页
第一章 绪论第19-45页
    1.1 肺纤维化的概述第19-23页
        1.1.1 肺纤维化的病因第20-21页
        1.1.2 肺纤维化的病理第21页
        1.1.3 肺纤维化的发病机制第21-22页
        1.1.4 肺纤维化的治疗第22-23页
    1.2 白藜芦醇(Resveratrol)第23-27页
        1.2.1 白藜芦醇的理化性质第24页
        1.2.2 白藜芦醇的提取第24-25页
        1.2.3 白藜芦醇的制备方法第25页
        1.2.4 白藜芦醇的药理作用第25-27页
        1.2.5 白藜芦醇与肺纤维化的关系第27页
    1.3 NF-κB第27-36页
        1.3.1 NF-κB的简述第27-30页
        1.3.2 NF-κB的抑制蛋白IκB(inhibitory κB)第30-31页
        1.3.3 IKK/N F-κB信号转导通路第31-32页
        1.3.4 TNF-α介导的IKK/N F-κB信号通路第32-33页
        1.3.5 NF-κB的活性抑制第33-34页
        1.3.6 NF-κB与TGF-β第34-35页
        1.3.7 NF-κB与肺纤维化第35-36页
    1.4 MicroRNAs第36-41页
        1.4.1 miRNA的生物学特性第36页
        1.4.2 miRNA的生物合成第36-38页
        1.4.3 miRNA的作用机制第38-40页
        1.4.4 miRNA和肺纤维化第40页
        1.4.5 miR-21第40-41页
    1.5 本实验研究的内容、目的意义及技术路线第41-45页
        1.5.1 研究的内容第41-42页
        1.5.2 目的意义第42-44页
        1.5.3 技术路线第44-45页
第二章 材料与方法第45-67页
    2.1 材料第45-50页
        2.1.1 实验动物第45页
        2.1.2 主要药物与实验试剂第45-47页
        2.1.3 实验仪器第47页
        2.1.4 主要液体的配制第47-49页
        2.1.5 引物第49-50页
    2.2 方法第50-67页
        2.2.1 动物模型的建立第50页
        2.2.2 羟脯氨酸含量的测定第50-52页
        2.2.3 肺组织病理切片及染色第52-54页
        2.2.4 Western Blotting蛋白质免疫印迹分析第54-59页
        2.2.5 RT-PCR检测mRNA第59-62页
        2.2.6 RT-PCR检测miRNA第62-66页
        2.2.7 RNA的质量检测第66页
        2.2.8 Real-time PCR的数据分析第66-67页
第三章 结果第67-78页
    3.1 肺组织的大体观察第67-68页
    3.2 肺组织病理切片的染色观察第68-71页
        3.2.1 HE染色观察第68-69页
        3.2.2 Masson染色观察第69-70页
        3.2.3 根据染色评分分级分析染色结果第70-71页
    3.3 羟脯氨酸含量(HYP)测定第71-72页
    3.4 Western blotting检测蛋白表达结果第72-74页
    3.5 PCR检测各组中RNA的表达结果第74-78页
        3.5.1 大鼠的肺组织中Ⅰ型胶原mRNA表达量的变化第74-75页
        3.5.2 大鼠的肺组织中Ⅲ型胶原mRNA表达量的变化第75-76页
        3.5.3 大鼠的肺组织中miR-21表达量的变化第76-78页
第四章 讨论第78-83页
    4.1 博莱霉素诱导大鼠的肺纤维化的动物模型的建立第78-79页
    4.2 大鼠的肺纤维化模型中NF-κB与miR-21表达变化第79-80页
    4.3 白藜芦醇对大鼠的肺纤维化的影响第80-82页
    4.4 白藜芦醇对NF-κB与miR-21表达变化的影响第82-83页
第五章 结论第83-84页
致谢第84-86页
参考文献第86-92页
附录 A 发表的论文第92页

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