摘要 | 第6-9页 |
Abstract | 第9-13页 |
英文缩略词表 | 第17-19页 |
第一章 绪论 | 第19-45页 |
1.1 肺纤维化的概述 | 第19-23页 |
1.1.1 肺纤维化的病因 | 第20-21页 |
1.1.2 肺纤维化的病理 | 第21页 |
1.1.3 肺纤维化的发病机制 | 第21-22页 |
1.1.4 肺纤维化的治疗 | 第22-23页 |
1.2 白藜芦醇(Resveratrol) | 第23-27页 |
1.2.1 白藜芦醇的理化性质 | 第24页 |
1.2.2 白藜芦醇的提取 | 第24-25页 |
1.2.3 白藜芦醇的制备方法 | 第25页 |
1.2.4 白藜芦醇的药理作用 | 第25-27页 |
1.2.5 白藜芦醇与肺纤维化的关系 | 第27页 |
1.3 NF-κB | 第27-36页 |
1.3.1 NF-κB的简述 | 第27-30页 |
1.3.2 NF-κB的抑制蛋白IκB(inhibitory κB) | 第30-31页 |
1.3.3 IKK/N F-κB信号转导通路 | 第31-32页 |
1.3.4 TNF-α介导的IKK/N F-κB信号通路 | 第32-33页 |
1.3.5 NF-κB的活性抑制 | 第33-34页 |
1.3.6 NF-κB与TGF-β | 第34-35页 |
1.3.7 NF-κB与肺纤维化 | 第35-36页 |
1.4 MicroRNAs | 第36-41页 |
1.4.1 miRNA的生物学特性 | 第36页 |
1.4.2 miRNA的生物合成 | 第36-38页 |
1.4.3 miRNA的作用机制 | 第38-40页 |
1.4.4 miRNA和肺纤维化 | 第40页 |
1.4.5 miR-21 | 第40-41页 |
1.5 本实验研究的内容、目的意义及技术路线 | 第41-45页 |
1.5.1 研究的内容 | 第41-42页 |
1.5.2 目的意义 | 第42-44页 |
1.5.3 技术路线 | 第44-45页 |
第二章 材料与方法 | 第45-67页 |
2.1 材料 | 第45-50页 |
2.1.1 实验动物 | 第45页 |
2.1.2 主要药物与实验试剂 | 第45-47页 |
2.1.3 实验仪器 | 第47页 |
2.1.4 主要液体的配制 | 第47-49页 |
2.1.5 引物 | 第49-50页 |
2.2 方法 | 第50-67页 |
2.2.1 动物模型的建立 | 第50页 |
2.2.2 羟脯氨酸含量的测定 | 第50-52页 |
2.2.3 肺组织病理切片及染色 | 第52-54页 |
2.2.4 Western Blotting蛋白质免疫印迹分析 | 第54-59页 |
2.2.5 RT-PCR检测mRNA | 第59-62页 |
2.2.6 RT-PCR检测miRNA | 第62-66页 |
2.2.7 RNA的质量检测 | 第66页 |
2.2.8 Real-time PCR的数据分析 | 第66-67页 |
第三章 结果 | 第67-78页 |
3.1 肺组织的大体观察 | 第67-68页 |
3.2 肺组织病理切片的染色观察 | 第68-71页 |
3.2.1 HE染色观察 | 第68-69页 |
3.2.2 Masson染色观察 | 第69-70页 |
3.2.3 根据染色评分分级分析染色结果 | 第70-71页 |
3.3 羟脯氨酸含量(HYP)测定 | 第71-72页 |
3.4 Western blotting检测蛋白表达结果 | 第72-74页 |
3.5 PCR检测各组中RNA的表达结果 | 第74-78页 |
3.5.1 大鼠的肺组织中Ⅰ型胶原mRNA表达量的变化 | 第74-75页 |
3.5.2 大鼠的肺组织中Ⅲ型胶原mRNA表达量的变化 | 第75-76页 |
3.5.3 大鼠的肺组织中miR-21表达量的变化 | 第76-78页 |
第四章 讨论 | 第78-83页 |
4.1 博莱霉素诱导大鼠的肺纤维化的动物模型的建立 | 第78-79页 |
4.2 大鼠的肺纤维化模型中NF-κB与miR-21表达变化 | 第79-80页 |
4.3 白藜芦醇对大鼠的肺纤维化的影响 | 第80-82页 |
4.4 白藜芦醇对NF-κB与miR-21表达变化的影响 | 第82-83页 |
第五章 结论 | 第83-84页 |
致谢 | 第84-86页 |
参考文献 | 第86-92页 |
附录 A 发表的论文 | 第92页 |