| 中文摘要 | 第4-6页 |
| abstract | 第6-7页 |
| 第一章 绪论 | 第10-12页 |
| 第二章 材料与方法 | 第12-23页 |
| 2.1 研究资料及仪器设备 | 第12-15页 |
| 2.1.1 研究对象 | 第12页 |
| 2.1.2 主要仪器与试剂 | 第12-14页 |
| 2.1.3 主要溶液配制 | 第14-15页 |
| 2.2 实验流程与方法 | 第15-23页 |
| 2.2.1 细胞培养与鉴定 | 第15页 |
| 2.2.2 细胞冻存 | 第15页 |
| 2.2.3 细胞复苏 | 第15-16页 |
| 2.2.4 实验分组 | 第16-17页 |
| 2.2.5 MTT法 | 第17页 |
| 2.2.6 鬼笔环肽(Phalloidine)染色 | 第17-18页 |
| 2.2.7 siRNA转染 | 第18-19页 |
| 2.2.8 蛋白样品提取 | 第19页 |
| 2.2.9 蛋白质定量(BCA法)及配平 | 第19-20页 |
| 2.2.10 WesternBlot | 第20-21页 |
| 2.2.11 AnnexinV-FITC/PI凋亡检测 | 第21页 |
| 2.2.12 LDH释放检测 | 第21-22页 |
| 2.2.13 统计学处理分析 | 第22-23页 |
| 第三章 结果 | 第23-43页 |
| 3.1 内皮细胞鉴定 | 第23页 |
| 3.2 LPS对HUVECs细胞的毒性作用 | 第23-28页 |
| 3.2.1 LPS降低内皮细胞存活率 | 第23-24页 |
| 3.2.2 LPS促进HUVECs的LDH释放 | 第24-25页 |
| 3.2.3 LPS促进HUVECs的凋亡 | 第25-28页 |
| 3.3 TSG显著抑制LPS诱导的HUVECs细胞毒性 | 第28-31页 |
| 3.3.1 TSG显著提高LPS诱导的内皮细胞存活率的降低 | 第28页 |
| 3.3.2 TSG显著抑制LPS诱导的LDH释放 | 第28-29页 |
| 3.3.3 TSG显著抑制LPS诱导的内皮细胞凋亡 | 第29-31页 |
| 3.4 TSG抑制LPS诱导的RhoA表达 | 第31-32页 |
| 3.5 TSG显著抑制LPS诱导的ROCK表达及活化 | 第32-34页 |
| 3.5.1 TSG显著抑制LPS诱导的ROCK表达 | 第32-33页 |
| 3.5.2 TSG显著抑制LPS诱导的ROCK活化 | 第33-34页 |
| 3.6 干扰RhoA/ROCK通路可显著降低LPS诱导的细胞毒性 | 第34-38页 |
| 3.6.1 RhoA、ROCK1、ROCK2沉默的鉴定 | 第34页 |
| 3.6.2 沉默RhoA/ROCK信号通路可显著提升内皮细胞存活率 | 第34-35页 |
| 3.6.3 沉默RhoA/ROCK信号通路可显著降低LPS诱导的LDH释放 | 第35-36页 |
| 3.6.4 沉默RhoA/ROCK信号通路可显著降低LPS诱导的内皮细胞凋亡 | 第36-38页 |
| 3.7 沉默RhoA/ROCK信号通路可显著改善LPS诱导的F-actin骨架形态变化 | 第38-40页 |
| 3.8 TSG可显著抑制LPS诱导的F-actin骨架改变 | 第40-43页 |
| 第四章 讨论 | 第43-45页 |
| 第五章 结论 | 第45-46页 |
| 参考文献 | 第46-49页 |
| 综述 RhoA/ROCK信号通路及与内皮功能障碍 | 第49-58页 |
| 参考文献 | 第53-58页 |
| 英文缩写词表 | 第58-59页 |
| 致谢 | 第59-60页 |
