| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 前言 | 第10-16页 |
| 第一部分 LPS诱导人胃癌细胞EMT | 第16-35页 |
| 1 实验材料 | 第16-20页 |
| 1.1 细胞系 | 第16页 |
| 1.2 主要试剂 | 第16-18页 |
| 1.3 主要仪器 | 第18页 |
| 1.4 主要试剂配制 | 第18-20页 |
| 2 实验方法 | 第20-27页 |
| 2.1 细胞培养 | 第20-21页 |
| 2.2 细胞形态学观察 | 第21页 |
| 2.3 划痕-愈合实验 | 第21页 |
| 2.4 Transwell侵袭实验 | 第21-22页 |
| 2.5 MTS法检测LPS对人胃癌细胞增殖的影响 | 第22页 |
| 2.6 实时荧光定量PCR | 第22-24页 |
| 2.7 Western blot检测蛋白的表达 | 第24-27页 |
| 2.8 统计学分析 | 第27页 |
| 3 结果 | 第27-32页 |
| 3.1 LPS诱导人胃癌细胞发生形态学改变 | 第27-28页 |
| 3.2 LPS诱导E-cadherin和N-cadherin表达变化 | 第28-29页 |
| 3.3 LPS促进人胃癌细胞迁移 | 第29-32页 |
| 3.4 LPS促进人胃癌细胞侵袭 | 第32页 |
| 4 讨论 | 第32-35页 |
| 第二部分 Shh信号通路介导LPS诱导的人胃癌细胞EMT | 第35-45页 |
| 1 实验材料 | 第35-36页 |
| 1.1 细胞系 | 第35页 |
| 1.2 主要试剂 | 第35-36页 |
| 1.3 主要仪器 | 第36页 |
| 1.4 主要试剂配制 | 第36页 |
| 2 实验方法 | 第36-37页 |
| 2.1 细胞培养 | 第36页 |
| 2.2 实时荧光定量PCR | 第36页 |
| 2.3 Western blot法检测蛋白的表达 | 第36页 |
| 2.4 划痕-愈合实验 | 第36页 |
| 2.5 Transwell侵袭实验 | 第36页 |
| 2.6 统计学分析 | 第36-37页 |
| 3 结果 | 第37-42页 |
| 3.1 LPS激活人胃癌细胞Shh信号通路 | 第37-38页 |
| 3.2 Cyclopamine抑制LPS激活Shh信号通路 | 第38-40页 |
| 3.3 Cyclopamine对EMT标志分子表达的影响 | 第40-41页 |
| 3.4 Cyclopamine抑制LPS诱导的人胃癌细胞迁移增强 | 第41-42页 |
| 3.5 Cyclopamine抑制LPS诱导的人胃癌细胞侵袭增强 | 第42页 |
| 4 讨论 | 第42-45页 |
| 第三部分 NF-kB信号通路在LPS诱导人胃癌细胞Shh信号活化中的作用 | 第45-50页 |
| 1 实验材料 | 第45-46页 |
| 1.1 细胞系 | 第45页 |
| 1.2 主要试剂 | 第45-46页 |
| 1.3 主要仪器 | 第46页 |
| 2 实验方法 | 第46页 |
| 2.1 细胞培养 | 第46页 |
| 2.2 实时荧光定量PCR | 第46页 |
| 2.3 Western blot法检测蛋白的表达 | 第46页 |
| 2.4 统计学分析 | 第46页 |
| 3 结果 | 第46-49页 |
| 3.1 LPS激活人胃癌细胞NF-κB信号通路 | 第46-47页 |
| 3.2 LPS通过NF-KB信号通路激活人胃癌细胞Shh信号通路 | 第47-49页 |
| 4 讨论 | 第49-50页 |
| 参考文献 | 第50-54页 |
| 附录一 英文缩写词表 | 第54-55页 |
| 附录二 攻读学位期间发表的论文专利及参加科研情况 | 第55-56页 |
| 致谢 | 第56页 |
