| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 缩略语表 | 第10-11页 |
| 1 引言 | 第11-13页 |
| 2 材料、仪器与方法 | 第13-22页 |
| 2.1 实验动物 | 第13页 |
| 2.2 主要仪器 | 第13-14页 |
| 2.3 主要试剂及其配方 | 第14-18页 |
| 2.3.1 常规试剂 | 第14-16页 |
| 2.3.2 免疫组织化学所用试剂 | 第16页 |
| 2.3.3 PCR所用试剂 | 第16-17页 |
| 2.3.4 透射电子显微镜所用试剂 | 第17-18页 |
| 2.4 实验方法 | 第18-21页 |
| 2.4.1 PCR鉴定技术 | 第18-19页 |
| 2.4.2 标本制作 | 第19页 |
| 2.4.3 免疫荧光技术 | 第19-20页 |
| 2.4.4 尼氏染色技术 | 第20页 |
| 2.4.5 墨汁灌注法 | 第20页 |
| 2.4.6 透射电镜标本制作 | 第20-21页 |
| 2.4.7 Evans blue标记技术 | 第21页 |
| 2.5 统计学处理 | 第21-22页 |
| 3 结果 | 第22-32页 |
| 3.1 RMS与神经血管龛 | 第22-24页 |
| 3.2 RMS与神经干细胞迁移 | 第24-25页 |
| 3.3 神经干细胞在嗅球的分化 | 第25-27页 |
| 3.4 Reelin与RMS发育 | 第27-32页 |
| 4 讨论 | 第32-36页 |
| 4.1 室管膜下区的血管龛是神经干细胞主要来源 | 第32-33页 |
| 4.2 血管协同放射状胶质细胞引导RMS中细胞迁移 | 第33-34页 |
| 4.3 Reelin缺失导致血管发育紊乱 | 第34页 |
| 4.4 Reelin缺失导致嗅球处神经干细胞整合障碍 | 第34-36页 |
| 5 结论 | 第36-37页 |
| 参考文献 | 第37-39页 |
| 文献综述 | 第39-48页 |
| 摘要 | 第39-40页 |
| 1 细胞迁移方式 | 第40-41页 |
| 1.1 胶质性迁移 | 第40页 |
| 1.2 神经元性迁移 | 第40-41页 |
| 1.3 血管性迁移 | 第41页 |
| 2 血管性迁移的发生 | 第41-43页 |
| 2.1 神经血管龛 | 第41-42页 |
| 2.2 血管性迁移方式 | 第42-43页 |
| 3 血管性迁移的调节机制 | 第43-45页 |
| 3.1 脑源性神经营养因子在细胞迁移中的作用 | 第43页 |
| 3.2 血管趋化因子在细胞迁移中的作用 | 第43-44页 |
| 3.3 血管内皮生长因子在细胞迁移中的作用 | 第44-45页 |
| 参考文献 | 第45-48页 |
| 致谢 | 第48-49页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第49-50页 |