| 摘要 | 第5-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 第一章 绪论 | 第11-31页 |
| 1.1 前言 | 第11页 |
| 1.2 可生物降解非织造材料的概述 | 第11-13页 |
| 1.2.1 可生物降解材料 | 第11-12页 |
| 1.2.2 可生物降解材料研究中存在的问题 | 第12-13页 |
| 1.3 生物降解原理概述 | 第13-16页 |
| 1.3.1 生物降解的机理 | 第13-14页 |
| 1.3.2 材料生物降解性能的影响因素 | 第14-16页 |
| 1.4 可生物降解非织造材料的降解环境体系 | 第16-19页 |
| 1.4.1 堆肥环境体系 | 第17页 |
| 1.4.2 水系环境体系 | 第17-19页 |
| 1.5 微生物多样性的分子生物学鉴定分析方法 | 第19-21页 |
| 1.5.1 扩增性RDNA限制性酶切片段分析(ARDRA)方法 | 第19-20页 |
| 1.5.2 16S RDNA的限制性片段长度多态性(RFLP)分析方法 | 第20页 |
| 1.5.3 变性梯度凝胶电泳(DGGE) | 第20-21页 |
| 1.6 PCR-DGGE技术原理 | 第21-23页 |
| 1.6.1 PCR-DGGE技术 | 第21-22页 |
| 1.6.2 PCR-DGGE技术的应用 | 第22-23页 |
| 1.7 高通量测序技术原理 | 第23-27页 |
| 1.7.1 高通量测序技术 | 第23-27页 |
| 1.7.2 高通量测序在宏基因组学中的运用 | 第27页 |
| 1.8 本课题研究背景和研究思路 | 第27-31页 |
| 1.8.1 研究背景 | 第27-28页 |
| 1.8.2 研究内容 | 第28-30页 |
| 1.8.3 研究思路 | 第30-31页 |
| 第二章 PLA/PHB材料的降解实验 | 第31-43页 |
| 2.1 实验样品与材料 | 第31-32页 |
| 2.1.1 主要药品试剂 | 第31页 |
| 2.1.2 主要仪器设备 | 第31-32页 |
| 2.2. 实验方法 | 第32-36页 |
| 2.2.1 林地土壤细菌的富集与驯化 | 第32-36页 |
| 2.3 实验结果 | 第36-41页 |
| 2.3.1 可生物降解材料的自然降解实验结果 | 第36-38页 |
| 2.3.2 可生物降解材料模拟环境体系加速降解试验结果分析 | 第38-41页 |
| 2.4 本章实验小结 | 第41-43页 |
| 第三章 富集微生物菌群的观察 | 第43-46页 |
| 3.1 实验方法 | 第43页 |
| 3.1.1 土壤传代富集菌群的形态观察 | 第43页 |
| 3.1.2 土壤传代富集菌群平板菌落计数实验 | 第43页 |
| 3.2 实验结果 | 第43-44页 |
| 3.2.1 土壤传代富集菌群的形态观察 | 第43-44页 |
| 3.2.2 六代细菌平板计数实验结果 | 第44页 |
| 3.3 本章实验小结 | 第44-46页 |
| 第四章 PCR-DGGE对土壤细菌群落的多样性分析 | 第46-64页 |
| 4.1 实验方法 | 第46-53页 |
| 4.1.1 土壤总DNA的提取 | 第46页 |
| 4.1.2 16SRDNA的PCR扩增策略 | 第46-47页 |
| 4.1.3 变性梯度凝胶电泳(DGGE)实验 | 第47-49页 |
| 4.1.4 DGGE重扩片段的连接转化实验 | 第49-52页 |
| 4.1.5 测序与数据处理 | 第52-53页 |
| 4.2 实验结果 | 第53-63页 |
| 4.2.1. 土壤总DNA的提取结果 | 第53页 |
| 4.2.2 土壤样品总DNA的16SRDNA扩增结果 | 第53-54页 |
| 4.2.3 DGGE图谱 | 第54-55页 |
| 4.2.4 QUANTITY ONE软件分析结果 | 第55-59页 |
| 4.2.5 切胶回收条带分析 | 第59-63页 |
| 4.3 本章实验小结 | 第63-64页 |
| 第五章 高通量测序 | 第64-67页 |
| 5.1 实验方法 | 第64页 |
| 5.2 实验结果 | 第64-67页 |
| 5.2.1 宏基因组16S测序结果分析 | 第64-67页 |
| 第六章 结果与讨论 | 第67-71页 |
| 参考文献 | 第71-76页 |
| 致谢 | 第76-77页 |
| 附件 | 第77页 |
