| 中文摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 英汉缩略词对照表 | 第10-12页 |
| 引言 | 第12-18页 |
| 实验内容 | 第18-47页 |
| 1 实验材料 | 第18-19页 |
| 1.1 实验药物 | 第18页 |
| 1.2 实验动物 | 第18页 |
| 1.3 主要仪器 | 第18-19页 |
| 1.4 主要试剂 | 第19页 |
| 2 实验方法 | 第19-32页 |
| 2.1 主要试剂的配制 | 第19-20页 |
| 2.2 建立12周龄豚鼠离体软骨细胞培养体系 | 第20-21页 |
| 2.3 软骨细胞的鉴定 | 第21-22页 |
| 2.4 MTT法检测含药培养液的最适干预浓度及最适干预时间 | 第22-23页 |
| 2.5 qPCR法检测实验各组细胞内Raf-1、MEK、ERK的mRNA含量差异 | 第23-26页 |
| 2.6 Western Blot测定实验各组细胞内Raf-1、MEK、p-MEK、ERK、p-ERK蛋白表达 | 第26-30页 |
| 2.7 数据统计分析 | 第30-31页 |
| 2.8 实验技术流程图 | 第31-32页 |
| 3 实验结果 | 第32-38页 |
| 3.1 镜下豚鼠软骨细胞的生长情况 | 第32页 |
| 3.2 豚鼠膝关节OA软骨细胞的染色鉴定 | 第32-33页 |
| 3.3 龟板胶、鹿角胶含药培养基的最适促增殖浓度及时间 | 第33-34页 |
| 3.4 实验组细胞内Raf-1、MEK、ERK的mRNA的表达量 | 第34-37页 |
| 3.5 实验各组细胞内Raf-1、MEK、p-MEK、ERK、p-ERK蛋白的表达情况 | 第37-38页 |
| 4 讨论 | 第38-47页 |
| 4.1 含药培养液干预体外培养细胞的可行性 | 第38页 |
| 4.2 选择实验动物细胞来源的依据 | 第38-39页 |
| 4.3 MEK抑制剂PD98059的选择 | 第39-40页 |
| 4.4 筛选含药培养基最适干预浓度及最适干预时间的必要性 | 第40页 |
| 4.5 qPCR法检测目的基因mRNA的表达 | 第40-41页 |
| 4.6 Western Blot法检测目的蛋白的表达 | 第41页 |
| 4.7 Raf/MEK/ERK信号通路与OA的关系 | 第41-44页 |
| 4.8 试析龟鹿二仙胶防治OA的作用及配伍机理 | 第44-47页 |
| 结论 | 第47-48页 |
| 参考文献 | 第48-52页 |
| 文献综述 | 第52-61页 |
| 参考文献 | 第57-61页 |
| 致谢 | 第61-62页 |
| 作者简历 | 第62页 |
