中文摘要 | 第10-15页 |
ABSTRACT | 第15-20页 |
符号说明 | 第21-23页 |
第一部分 Notch-1通路相关因子在早期自然流产患者绒毛组织中的表达 | 第23-48页 |
前言 | 第23-25页 |
1.1 材料与方法 | 第25-37页 |
1.1.1 实验材料 | 第25-29页 |
1.1.1.1 样本采集 | 第25页 |
1.1.1.2 一般情况 | 第25-26页 |
1.1.1.3 主要试剂 | 第26-27页 |
1.1.1.4 主要仪器 | 第27-28页 |
1.1.1.5 溶液配方 | 第28-29页 |
1.1.2 实验方法 | 第29-37页 |
1.1.2.1 HE染色 | 第30-31页 |
1.1.2.2 RT-PCR | 第31-32页 |
1.1.2.3 Western blot | 第32-35页 |
1.1.2.4 免疫组化 | 第35-36页 |
1.1.2.5 统计分析 | 第36-37页 |
1.2 结果 | 第37-39页 |
1.2.1 绒毛组织形态学观察结果 | 第37页 |
1.2.2 ESA患者绒毛组织内VEGF/VEGFRs表达失衡 | 第37-38页 |
1.2.3 ESA患者绒毛组织内Notch-1通路遭到抑制 | 第38-39页 |
1.3 讨论 | 第39-42页 |
1.4 结论 | 第42-43页 |
附表 | 第43-45页 |
附图 | 第45-48页 |
第二部分 Notch-1通路促进滋养层细胞生长和血管生成 | 第48-76页 |
前言 | 第48-50页 |
2.1 材料与方法 | 第50-60页 |
2.1.1 实验材料 | 第50-53页 |
2.1.1.1 样本来源 | 第50-51页 |
2.1.1.2 主要试剂 | 第51-52页 |
2.1.1.3 主要仪器 | 第52页 |
2.1.1.4 溶液配方 | 第52-53页 |
2.1.2 实验方法 | 第53-60页 |
2.1.2.1 滋养细胞原代培养及鉴定 | 第53-54页 |
2.1.2.2 药物处理 | 第54-55页 |
2.1.2.3 RT-PCR | 第55页 |
2.1.2.4 Western blot | 第55页 |
2.1.2.5 MTT实验 | 第55-56页 |
2.1.2.6 流式细胞术 | 第56页 |
2.1.2.7 免疫荧光 | 第56-57页 |
2.1.2.8 微血管生成实验 | 第57页 |
2.1.2.9 过表达载体的构建 | 第57-59页 |
2.1.2.10 转染 | 第59页 |
2.1.2.11 Hoechst染色实验 | 第59页 |
2.1.2.12 统计分析 | 第59-60页 |
2.2 结果 | 第60-63页 |
2.2.1 滋养细胞的培养及鉴定 | 第60页 |
2.2.2 DAPT能抑制滋养细胞内Notch-1通路 | 第60页 |
2.2.3 DAPT降低滋养细胞的增殖能力 | 第60-61页 |
2.2.4 DAPT通过线粒体通路促进滋养细胞凋亡 | 第61页 |
2.2.5 DAPT抑制滋养细胞的血管生成能力 | 第61-62页 |
2.2.6 过表达Notch-1能逆转DAPT诱导的滋养层细胞凋亡 | 第62页 |
2.2.7 过表达Notch-1能逆转DAPT诱导的血管生成障碍 | 第62-63页 |
2.3 讨论 | 第63-66页 |
2.4 结论 | 第66-67页 |
附表 | 第67-69页 |
附图 | 第69-76页 |
参考文献 | 第76-88页 |
文献综述 Notch通路在植入和胎盘形成过程中作用的研究进展 | 第88-107页 |
参考文献 | 第100-107页 |
致谢 | 第107-108页 |
攻读学位期间发表的学术论文目录 | 第108-109页 |
学位论文评阅及答辩情况表 | 第109-110页 |
外文论文 | 第110-135页 |