| 摘要 | 第5-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 缩略语用表 | 第8-10页 |
| 第一章 小分子化合物S-(3,4-二氯苯甲基)异硫脲对鱼腥蓝细菌PCC 7120中细胞分裂相关事件的影响 | 第10-58页 |
| 1 文献综述 | 第10-34页 |
| 1.1 细胞分裂关键蛋白—FtsZ | 第10-13页 |
| 1.1.1 FtsZ与微管蛋白的相似性 | 第10-11页 |
| 1.1.2 FtsZ的定位 | 第11页 |
| 1.1.3 FtsZ的主要功能 | 第11-12页 |
| 1.1.4 与FtsZ相互作用的分裂相关蛋白 | 第12-13页 |
| 1.2 细胞分裂发生位置的确定 | 第13-18页 |
| 1.2.1 Min系统 | 第13-17页 |
| 1.2.2 核酸位阻(Nucleoid Occlusion) | 第17页 |
| 1.2.3 MipZ的调控 | 第17-18页 |
| 1.3 染色体分离相关蛋白 | 第18-30页 |
| 1.3.1 ParAB | 第18-20页 |
| 1.3.2 MreB | 第20-30页 |
| 1.4 A22-MreB的抑制物 | 第30-32页 |
| 1.5 研究目的和意义 | 第32-34页 |
| 2. 材料与方法 | 第34-38页 |
| 2.1 菌株 | 第34页 |
| 2.2 培养基配方 | 第34-35页 |
| 2.3 主要分子生物学试剂 | 第35页 |
| 2.4 实验方法 | 第35-38页 |
| 2.4.1 鱼腥蓝细菌PCC 7120异形胞的诱导 | 第35页 |
| 2.4.2 鱼腥蓝细菌PCC 7120总DNA的抽提(Golden et al.,1985) | 第35-36页 |
| 2.4.3 A22抑菌曲线的测定 | 第36页 |
| 2.4.4 DAPI染色 | 第36页 |
| 2.4.5 A22抗性突变株的筛选 | 第36-38页 |
| 3. 结果与分析 | 第38-56页 |
| 3.1 A22抑菌曲线的测定 | 第38-39页 |
| 3.2 A22对鱼腥蓝细菌PCC 7120形状的影响 | 第39-43页 |
| 3.3 A22对细胞分裂的影响 | 第43-45页 |
| 3.4 A22对DNA分离的影响 | 第45-49页 |
| 3.5 A22对异形胞发育的影响 | 第49页 |
| 3.6 A22抗性突变株的筛选 | 第49-56页 |
| 3.6.1 A22抗性突变株在液体培养基中的生长曲线 | 第50-51页 |
| 3.6.2 A22抗性突变株C23的表型观察 | 第51-54页 |
| 3.6.3 A22抗性突变株突变位点的确定 | 第54-56页 |
| 4. 总结与讨论 | 第56-58页 |
| 第二章 鱼腥蓝细菌PCC 7120中可能参与异形胞发育调控的基因簇all2897-all2899的功能初探 | 第58-101页 |
| 1. 文献综述 | 第58-76页 |
| 1.1 鱼腥蓝细菌PCC 7120的简介 | 第58-59页 |
| 1.2 异形胞的特点 | 第59-60页 |
| 1.3 异形胞发育的调控 | 第60-69页 |
| 1.3.1 缺氮后的早期反应 | 第60-66页 |
| 1.3.2 异形胞的模式形成 | 第66-68页 |
| 1.3.3 异形胞的成熟 | 第68-69页 |
| 1.4 鱼腥蓝细菌PCC 7120中的信号传导系统 | 第69-74页 |
| 1.4.1 双组分系统(Two-component signal transduction) | 第69-71页 |
| 1.4.2 丝氨酸/苏氨酸和酪氨酸激酶与蛋白磷酸酶 | 第71页 |
| 1.4.3 鱼腥蓝细菌PCC 7120中的信号传导系统简介 | 第71-74页 |
| 1.5 研究目的与意义 | 第74-76页 |
| 2. 材料与方法 | 第76-82页 |
| 2.1 菌株 | 第76页 |
| 2.2 培养基配方 | 第76页 |
| 2.3 主要分子生物学试剂 | 第76-77页 |
| 2.4 实验方法 | 第77-82页 |
| 2.4.1 质粒DNA的制备及其基本操作 | 第77页 |
| 2.4.2 质粒DNA的其它有关操作 | 第77页 |
| 2.4.3 大肠杆菌的常规转化 | 第77页 |
| 2.4.4 鱼腥蓝细菌PCC 7120异形胞的诱导 | 第77页 |
| 2.4.5 鱼腥蓝细菌PCC 7120总DNA的抽提 | 第77页 |
| 2.4.6 蓝细菌结合转移(三亲本杂交) | 第77-78页 |
| 2.4.7 接合转移转化子的验证 | 第78页 |
| 2.4.8 鱼腥蓝细菌PCC 7120 RNA提取和纯化 | 第78-80页 |
| 2.4.9 RT-PCR和Real-Time PCR | 第80-82页 |
| 3. 结果与分析 | 第82-99页 |
| 3.1 工作基础:all2897-all2899基因簇成员的中断失活 | 第82-84页 |
| 3.2 all2897-all2899基因簇位于同一个操纵子中 | 第84-85页 |
| 3.3 all2897-all2899基因簇的表达受缺氮诱导 | 第85-86页 |
| 3.4 all2898超表达与all2898、all2897共同超表达 | 第86-91页 |
| 3.5 M2898的遗传互补 | 第91-99页 |
| 3.5.1 超表达互补 | 第91-94页 |
| 3.5.2 全基因簇互补 | 第94-97页 |
| 3.5.3 双交换互补 | 第97-99页 |
| 4. 总结与讨论 | 第99-101页 |
| 参考文献 | 第101-113页 |
| 附录 | 第113-114页 |
| 致谢 | 第114页 |
