摘要 | 第4-6页 |
英文摘要 | 第6-8页 |
符号说明 | 第11-12页 |
前言 | 第12-15页 |
1 材料与方法 | 第15-27页 |
1.1 实验材料 | 第15-18页 |
1.1.1 新鲜标本来源 | 第15页 |
1.1.2 石蜡标本的收集 | 第15页 |
1.1.3 血清标本的收集 | 第15页 |
1.1.4 卵巢癌细胞株 | 第15-16页 |
1.1.5 试剂和耗材 | 第16页 |
1.1.6 仪器和设备 | 第16-17页 |
1.1.7 主要溶液的配制 | 第17-18页 |
1.2 实验方法 | 第18-27页 |
1.2.1 各类卵巢组织总RNA的提取 | 第18-19页 |
1.2.2 cDNA合成 | 第19-20页 |
1.2.3 实时荧光定量(real-time PCR) | 第20-21页 |
1.2.4 制作标准曲线及扩增效率一致性验证 | 第21页 |
1.2.5 验证PCR产物特异性 | 第21页 |
1.2.6 免疫组织化学方法 | 第21-23页 |
1.2.7 酶联免疫吸附法(ELISA) | 第23-24页 |
1.2.8 免疫细胞化学方法 | 第24-25页 |
1.2.9 数据分析 | 第25-27页 |
2 结果 | 第27-39页 |
2.1 ELISA检测VEGF在血清中的表达 | 第27-28页 |
2.2 免疫组化结果 | 第28-31页 |
2.2.1 VEGFR-1和VEGFR-2在卵巢组织中的表达情况 | 第28-29页 |
2.2.2 Ezrin和LaminA/C蛋白在卵巢组织中的表达情况 | 第29-30页 |
2.2.3 卵巢组织中的MVD计数 | 第30-31页 |
2.3 免疫细胞化学检测VEGFR在HO-8910、HO-8910PM、SKOV-3和SKOV-3ip中的表达 | 第31-33页 |
2.4 荧光定量PCR检测Ezrin、LaminA/C mRNA及miR-205在卵巢组织中的表达水平 | 第33-39页 |
2.4.1 卵巢组织总RNA的提取与质量检测 | 第33页 |
2.4.2 标准曲线的建立及PCR产物特异性检测 | 第33-39页 |
3 讨论 | 第39-44页 |
4 结论 | 第44-45页 |
参考文献 | 第45-50页 |
综述 | 第50-62页 |
参考文献 | 第57-62页 |
攻读学位期间主要的研究成果 | 第62-63页 |
致谢 | 第63页 |