中文摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-7页 |
第1章 绪论 | 第12-32页 |
1.1 钒的研究进展 | 第14-18页 |
1.1.1 钒的结构和性质 | 第14-16页 |
1.1.2 钒的生物效应 | 第16-17页 |
1.1.3 钒化合物与糖尿病 | 第17-18页 |
1.2 糖尿病心肌损伤 | 第18-23页 |
1.2.1 心肌细胞代谢紊乱 | 第19-21页 |
1.2.2 心脏功能改变 | 第21-23页 |
1.3 内质网应激 | 第23-27页 |
1.3.1 错误折叠/未折叠蛋白在内质网内积聚所发生的未折叠蛋白反应 | 第24页 |
1.3.2 内质网应激分子伴侣 | 第24-27页 |
1.4 内质网应激与细胞凋亡 | 第27-32页 |
1.4.1 ERS诱导的细胞凋亡 | 第28-30页 |
1.4.2 内质网应激与糖尿病心肌损伤 | 第30-32页 |
第2章 联麦氧钒对糖尿病大鼠心肌保护作用的实验研究 | 第32-46页 |
2.1 材料与方法 | 第33-36页 |
2.1.1 实验动物 | 第33页 |
2.1.2 实验仪器与试剂 | 第33-34页 |
2.1.3 糖尿病大鼠模型制备及实验分组 | 第34页 |
2.1.4 样本采集及处理 | 第34页 |
2.1.5 苏木精-伊红(HE)染色 | 第34-35页 |
2.1.6 大鼠心肌TUNEL检测 | 第35-36页 |
2.2 统计学方法 | 第36页 |
2.3 结果 | 第36-41页 |
2.3.1 实验大鼠基本情况 | 第36-38页 |
2.3.2 DM大鼠心肌组织凋亡变化 | 第38-41页 |
2.4 讨论 | 第41-46页 |
第3章 联麦氧钒对糖尿病大鼠内质网应激途径影响心肌损伤的研究 | 第46-62页 |
3.1 材料与方法 | 第47-52页 |
3.1.1 实验仪器 | 第47页 |
3.1.2 实验试剂 | 第47-48页 |
3.1.3 动物选择及实验分组 | 第48页 |
3.1.4 Western Blot检测 | 第48-49页 |
3.1.5 qPCR检测GRP78、PERK、CHOP、XBP-1 mRNA水平 | 第49-52页 |
3.1.6 统计学方法 | 第52页 |
3.2 结果 | 第52-56页 |
3.2.1 各组大鼠内质网应激相关蛋白表达水平 | 第52-54页 |
3.2.2 各组大鼠心肌GRP78、PERK、CHOP、XBP-1 蛋白mRNA测定 | 第54-55页 |
3.2.3 免疫组化结果 | 第55-56页 |
3.3 讨论 | 第56-62页 |
第4章 BMOV调节高糖诱导的H9C2(2-1)心肌细胞内质网应激作用研究 | 第62-76页 |
4.1 材料与方法 | 第62-67页 |
4.1.1 细胞株 | 第62页 |
4.1.2 仪器设备 | 第62-63页 |
4.1.3 实验试剂 | 第63-64页 |
4.1.4 心肌细胞培养 | 第64-65页 |
4.1.5 MTT比色法检测BMOV的细胞毒性实验 | 第65-66页 |
4.1.6 H9C2(2-1)大鼠心肌细胞的体外模型 | 第66页 |
4.1.7 Annexin V-FITC/PI法检测细胞凋亡 | 第66-67页 |
4.1.8 Westernblot法检测培养细胞内质网应激相关蛋白 | 第67页 |
4.1.9 统计方法 | 第67页 |
4.2 实验结果 | 第67-72页 |
4.2.1 BMOV对H9C2(2-1)细胞活力的作用 | 第67-68页 |
4.2.2 Annexin V-FITC/PI法检测凋亡 | 第68-70页 |
4.2.3 Western Blot检测内质网相关蛋白 | 第70-72页 |
4.3 讨论 | 第72-76页 |
第5章 结论 | 第76-78页 |
5.1 创新点 | 第77页 |
5.2 不足之处 | 第77-78页 |
参考文献 | 第78-94页 |
作者简介及在学期间所取得的科研成果 | 第94-96页 |
致谢 | 第96页 |