| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 中英文缩略词对照表 | 第12-13页 |
| 1 前言 | 第13-17页 |
| 2 材料与方法 | 第17-27页 |
| 2.1 材料 | 第17-18页 |
| 2.1.1 研究对象 | 第17页 |
| 2.1.2 外周血样本来源 | 第17页 |
| 2.1.3 脂肪组织样本来源 | 第17-18页 |
| 2.1.4 主要仪器设备 | 第18页 |
| 2.1.5 主要试剂 | 第18页 |
| 2.2 方法 | 第18-27页 |
| 2.2.1 调查内容 | 第18-19页 |
| 2.2.2 外周血基因组DNA提取 | 第19-20页 |
| 2.2.3 亚硫酸氢钠修饰 | 第20-21页 |
| 2.2.4 sequenom质谱法检测启动子区域甲基化 | 第21-22页 |
| 2.2.5 脂肪组织总RNA的提取 | 第22-23页 |
| 2.2.6 总RNA质量及含量检测 | 第23页 |
| 2.2.7 RNA逆转录 | 第23-24页 |
| 2.2.8 实时荧光定量PCR反应 | 第24-25页 |
| 2.2.9 荧光定量结果分析方法 | 第25页 |
| 2.2.10 实验室检测质量控制 | 第25页 |
| 2.2.11 统计学分析 | 第25-27页 |
| 3 结果 | 第27-36页 |
| 3.1 研究对象一般情况 | 第27页 |
| 3.2 CIDE-B基因启动子序列甲基化情况比较 | 第27-29页 |
| 3.2.1 启动子CpG位点甲基化水平比较 | 第27-28页 |
| 3.2.2 质谱法检测启动子序列甲基化图谱结果 | 第28页 |
| 3.2.3 CIDE-B基因启动子序列甲基化对BMI的影响 | 第28-29页 |
| 3.2.4 CIDE-B基因启动子序列甲基化对腰臀比的影响 | 第29页 |
| 3.3 脂肪组织总RNA提取 | 第29页 |
| 3.4 SYBR GreenⅠ荧光定量PCR扩增及溶解曲线 | 第29-30页 |
| 3.5 荧光定量PCR检测CIDE-B基因的表达量 | 第30-31页 |
| 3.5.1 皮下和大网膜脂肪组织CIDE-B基因mRNA相对表达量 | 第30页 |
| 3.5.2 正常组和对照组皮下脂肪组织CIDE-B基因mRNA相对表达量 | 第30页 |
| 3.5.3 正常组和对照组大网膜脂肪组织CIDE-B基因mRNA相对表达量 | 第30-31页 |
| 3.6 CIDE-B mRNA的表达与临床生化指标的关系 | 第31-33页 |
| 3.6.1 大网膜脂肪组织CIDE-B基因m RNA表达与临床生化指标关系 | 第31页 |
| 3.6.2 皮下脂肪组织CIDE-B基因mRNA表达与临床生化指标关系 | 第31-33页 |
| 3.7 CIDE-B基因启动子甲基化对mRNA的表达量的影响 | 第33-36页 |
| 3.7.1 启动子甲基化对大网膜脂肪组织mRNA表达量的影响 | 第33-34页 |
| 3.7.2 启动子甲基化对皮下脂肪组织mRNA表达量的影响 | 第34-36页 |
| 4 讨论 | 第36-43页 |
| 4.1 CIDE-B调控脂质代谢的机制 | 第36-37页 |
| 4.2 DNA甲基化在肥胖中的研究进展 | 第37-38页 |
| 4.3 检测DNA甲基化的常用方法 | 第38-39页 |
| 4.4 CIDE-B基因mRNA表达的相对定量检测 | 第39-42页 |
| 4.5 研究局限和不足之处 | 第42-43页 |
| 5 结论 | 第43-44页 |
| 参考文献 | 第44-52页 |
| 综述 | 第52-62页 |
| 参考文献 | 第58-62页 |
| 个人简历 | 第62-63页 |
| 致谢 | 第63页 |
