| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-7页 |
| 第1章 文献综述 | 第12-28页 |
| 1.1 黄参资源研究概述 | 第12-18页 |
| 1.1.1 黄参的植物学特征及地理分布 | 第12页 |
| 1.1.2 黄参的营养价值 | 第12-15页 |
| 1.1.3 黄参的药用价值 | 第15页 |
| 1.1.4 黄参的化学成分组成 | 第15-16页 |
| 1.1.5 黄参的生物活性 | 第16-17页 |
| 1.1.6 黄参资源的开发利用现状 | 第17-18页 |
| 1.2 植物多酚的研究进展 | 第18-26页 |
| 1.2.1 植物多酚结构、分类 | 第18页 |
| 1.2.2 植物多酚的提取 | 第18-20页 |
| 1.2.3 植物多酚的分离纯化 | 第20-22页 |
| 1.2.4 植物多酚的含量测定 | 第22-23页 |
| 1.2.5 植物多酚的结构鉴定 | 第23-24页 |
| 1.2.6 植物多酚的生物活性 | 第24-26页 |
| 1.3 立题依据和意义 | 第26页 |
| 1.4 主要研究内容 | 第26-28页 |
| 第2章 黄参茎叶多酚的超声波辅助提取 | 第28-40页 |
| 2.1 引言 | 第28页 |
| 2.2 材料、试剂及设备 | 第28-29页 |
| 2.2.1 材料 | 第28页 |
| 2.2.2 试剂 | 第28-29页 |
| 2.2.3 主要仪器与设备 | 第29页 |
| 2.3 试验方法 | 第29-30页 |
| 2.3.1 样品处理 | 第29页 |
| 2.3.2 建立标准曲线 | 第29页 |
| 2.3.3 总酚含量的测定 | 第29-30页 |
| 2.3.4 RSM优化设计 | 第30页 |
| 2.4 数据处理 | 第30-31页 |
| 2.5 结果与分析 | 第31-39页 |
| 2.5.1 浸提溶剂对SGslP得率的影响 | 第31页 |
| 2.5.2 超声波辅助提取单因素试验 | 第31-34页 |
| 2.5.3 响应曲面法优化SGslP的提取工艺 | 第34-39页 |
| 2.6 本章小结 | 第39-40页 |
| 第3章 黄参茎叶多酚的纯化工艺研究 | 第40-54页 |
| 3.1 引言 | 第40页 |
| 3.2 材料、试剂及设备 | 第40-41页 |
| 3.2.1 材料 | 第40-41页 |
| 3.2.2 主要仪器与设备 | 第41页 |
| 3.2.3 大孔吸附树脂 | 第41页 |
| 3.3 试验方法 | 第41-44页 |
| 3.3.1 大孔吸附树脂的筛选 | 第41-42页 |
| 3.3.2 静态吸附和解吸实验 | 第42-44页 |
| 3.3.3 动态吸附和解吸实验 | 第44页 |
| 3.4 数据处理 | 第44页 |
| 3.5 结果与分析 | 第44-52页 |
| 3.5.1 大孔吸附树脂的筛选 | 第44-45页 |
| 3.5.2 静态吸附与解吸实验 | 第45-50页 |
| 3.5.3 动态吸附与解吸 | 第50-52页 |
| 3.6 本章小结 | 第52-54页 |
| 第4章 HPLC-MS-MS分析黄参茎叶多酚的组成 | 第54-66页 |
| 4.1 引言 | 第54-55页 |
| 4.2 材料、试剂及设备 | 第55页 |
| 4.2.1 材料 | 第55页 |
| 4.2.2 试剂 | 第55页 |
| 4.2.3 主要仪器与设备 | 第55页 |
| 4.3 试验方法 | 第55-57页 |
| 4.3.1 色谱条件 | 第55-56页 |
| 4.3.2 质谱条件 | 第56-57页 |
| 4.4 结果与分析 | 第57-64页 |
| 4.4.1 离子源的选择 | 第57页 |
| 4.4.2 检测模式的确定 | 第57-58页 |
| 4.4.3 高效液相色谱流动相条件的选择 | 第58-59页 |
| 4.4.4 黄参茎叶多酚的质谱检测以及成分鉴定 | 第59-62页 |
| 4.4.5 黄参茎叶多酚单体酚含量的测定 | 第62-64页 |
| 4.5 本章小结 | 第64-66页 |
| 第5章 黄参茎叶多酚的生物活性研究 | 第66-92页 |
| 5.1 引言 | 第66页 |
| 5.2 材料与设备 | 第66-67页 |
| 5.2.1 实验材料 | 第66页 |
| 5.2.2 试剂耗材 | 第66-67页 |
| 5.2.3 主要仪器与设备 | 第67页 |
| 5.3 试验方法 | 第67-72页 |
| 5.3.1 PSGslP体外抗氧化活性的测定 | 第67-69页 |
| 5.3.2 PSGslP对DNA损伤的保护作用 | 第69-70页 |
| 5.3.3 PSGslP对碳水化合物水解酶的抑制作用 | 第70页 |
| 5.3.4 PSGslP对四氯化碳导致小鼠肝损伤的保护作用 | 第70-71页 |
| 5.3.5 PSGslP对CCl_4所致BRL大鼠肝细胞损伤的保护作用 | 第71-72页 |
| 5.4 实验数据处理 | 第72页 |
| 5.5 结果与讨论 | 第72-89页 |
| 5.5.1 PSGslP的抗氧化活性 | 第72-76页 |
| 5.5.2 PSGslP对DNA损伤的保护作用 | 第76-79页 |
| 5.5.3 PSGslP对碳水化合物水解酶的抑制作用 | 第79-81页 |
| 5.5.4 PSGslP对CCl_4所致小鼠肝损伤的保护作用 | 第81-87页 |
| 5.5.5 PSGslP对CCl_4所致BRL大鼠肝细胞损伤的保护作用 | 第87-89页 |
| 5.6 本章小结 | 第89-92页 |
| 第6章 黄参保健露酒的制备工艺及其体外抗氧化性研究 | 第92-100页 |
| 6.1 引言 | 第92页 |
| 6.2 材料、试剂及设备 | 第92-93页 |
| 6.2.1 材料 | 第92页 |
| 6.2.2 试剂 | 第92-93页 |
| 6.2.3 主要仪器与设备 | 第93页 |
| 6.3 试验方法 | 第93-95页 |
| 6.3.1 黄参茎叶多酚提取液的制备 | 第93页 |
| 6.3.2 葡萄酒基酒的酿制 | 第93页 |
| 6.3.3 黄参保健露酒的制备工艺优化 | 第93-94页 |
| 6.3.4 黄参保健露酒的体外抗氧化活性研究 | 第94-95页 |
| 6.3.5 数据处理 | 第95页 |
| 6.4 结果与分析 | 第95-99页 |
| 6.4.1 黄参保健露酒配方的确定 | 第95-97页 |
| 6.4.2 黄参保健露酒理化指标的测定 | 第97页 |
| 6.4.3 黄参保健露酒的体外抗氧化活性研究 | 第97-99页 |
| 6.5 本章小结 | 第99-100页 |
| 第7章 结论、创新点与展望 | 第100-104页 |
| 7.1 结论 | 第100-101页 |
| 7.2 创新点 | 第101-102页 |
| 7.3 展望 | 第102-104页 |
| 参考文献 | 第104-120页 |
| 致谢 | 第120-122页 |
| 攻读学位期间研究成果 | 第122-125页 |
