| 中文摘要 | 第4-7页 |
| abstract | 第7-9页 |
| 引言 | 第13-14页 |
| 材料 | 第14-16页 |
| 一、实验材料和仪器设备 | 第14-15页 |
| 二、试剂 | 第15-16页 |
| 方法 | 第16-26页 |
| 一、伦理陈述 | 第16页 |
| 二、细胞培养 | 第16-18页 |
| 三、基因芯片（Microarray）技术 | 第18页 |
| 四、RNA提取（Trizol法） | 第18页 |
| 五、逆转录 | 第18-19页 |
| 六、实时荧光定量PCR（Real-time PCR） | 第19页 |
| 七、流式细胞术检测蛋白表达 | 第19-20页 |
| 八、染色质免疫共沉淀（ChIP-Seq）数据分析 | 第20页 |
| 九、管状形成实验检测血管生成 | 第20页 |
| 十、液相芯片（Milliplex）技术 | 第20页 |
| 十一、蛋白芯片技术 | 第20-21页 |
| 十二、动物实验 | 第21-22页 |
| 十三、免疫组化检测蛋白表达 | 第22-23页 |
| 十四、临床样本统计 | 第23-24页 |
| 十五、Meta分析 | 第24-25页 |
| 十六、统计学处理 | 第25-26页 |
| 结果 体外实验 | 第26-36页 |
| 一、FH535改变胰腺癌细胞多种生物学功能 | 第26-27页 |
| 二、FH535削弱胰腺癌干细胞干性 | 第27页 |
| 三、FH535降低胰腺癌干细胞群比例 | 第27-28页 |
| 五、对 β-catenin ChIP-Seq数据分析预测 β-catenin靶基因 | 第28-32页 |
| 六、β-catenin靶基因生物学功能 | 第32页 |
| 七、FH535在mRNA水平上抑制多种血管生成基因表达 | 第32-33页 |
| 八、FH535在蛋白质水平上抑制多种血管生成基因表达 | 第33-34页 |
| 九、FH535下调胰腺癌细胞分泌的促血管生成细胞因子 | 第34-35页 |
| 十、FH535在体外对MVD的影响 | 第35-36页 |
| 体内实验 | 第36-39页 |
| 一、移植瘤免疫组化 | 第36-37页 |
| 二、FH535抑制移植瘤生长 | 第37-39页 |
| 临床资料统计分析 | 第39-41页 |
| 一、胰腺癌临床资料统计 | 第39页 |
| 二、细胞核 β-catenin与Ki-67 表达水平的关系 | 第39-40页 |
| 三、胰腺癌细胞核 β-catenin对患者预后的影响 | 第40-41页 |
| Meta分析 | 第41-44页 |
| 一、Meta分析文献筛选流程及结果 | 第41页 |
| 二、五项研究的基本特征 | 第41-42页 |
| 三、β-catenin通路激活对胰腺癌预后的影响 | 第42-44页 |
| 讨论 | 第44-47页 |
| 结论 | 第47-48页 |
| 参考文献 | 第48-55页 |
| 中英文对照缩略词表 | 第55-57页 |
| 攻读学位期间公开发表的论文 | 第57-58页 |
| 致谢 | 第58-59页 |
