| 摘要 | 第6-8页 |
| ABSTRACT | 第8-10页 |
| 第一章 成体神经发生及突触可塑性 | 第14-34页 |
| 1.1 神经源性和非神经源性区域 | 第14-16页 |
| 1.2 成体神经发生是成年大脑神经发育行为 | 第16-17页 |
| 1.3 成体神经发生起源于神经干细胞 | 第17-18页 |
| 1.4 海马成体神经发生过程 | 第18-22页 |
| 1.4.1 神经元发育的不同阶段 | 第18-22页 |
| 1.5 成年SVZ和嗅球中的神经发生 | 第22-23页 |
| 1.6 海马中的纤维联系 | 第23-24页 |
| 1.6.1 突触的传入纤维 | 第23-24页 |
| 1.6.2 突触的传出纤维 | 第24页 |
| 1.7 成年嗅球上皮和外周神经系统其他部分的神经发生 | 第24-25页 |
| 1.8 神经发生的激活现象 | 第25-26页 |
| 1.9 神经发生的调控因素 | 第26-31页 |
| 1.10 成体神经发生的功能 | 第31页 |
| 1.11 成体神经发生的医学价值 | 第31-32页 |
| 1.12 成体神经发生的未来展望 | 第32-34页 |
| 第二章 苦马豆素抑制成体神经发生并且损伤学习记忆 | 第34-49页 |
| 2.1 材料方法 | 第35-38页 |
| 2.1.1 试剂和抗体 | 第35页 |
| 2.1.2 细胞培养 | 第35页 |
| 2.1.3 BrdU处理细胞 | 第35-36页 |
| 2.1.4 PI处理细胞 | 第36页 |
| 2.1.5 动物试验设计 | 第36页 |
| 2.1.6 动物取材与切片 | 第36页 |
| 2.1.7 齿状回中干细胞数增殖数量统计 | 第36-37页 |
| 2.1.8 齿状回中新生神经元数量统计 | 第37页 |
| 2.1.9 细胞存活和分化 | 第37页 |
| 2.1.10 免疫印迹杂交 | 第37-38页 |
| 2.1.11 水迷宫试验 | 第38页 |
| 2.1.12 数据分析 | 第38页 |
| 2.2 结果 | 第38-47页 |
| 2.2.1 苦马豆素抑制细胞增殖并引起细胞凋亡 | 第38-39页 |
| 2.2.2 苦马豆素抑制海马齿状回中的神经干细胞的增殖 | 第39-42页 |
| 2.2.3 苦马豆素影响新生细胞的存活和分化，但不影响其迁移 | 第42-44页 |
| 2.2.4 苦马豆素损伤小鼠海马学习记忆功能 | 第44-45页 |
| 2.2.5 苦马豆素处理对大脑皮层神经元增殖和迁移的影响 | 第45页 |
| 2.2.6 苦马豆素处理对海马神经元增殖和迁移的影响 | 第45-47页 |
| 2.3 讨论 | 第47-49页 |
| 第三章 锂、铅和丙烯酰胺对小鼠成体神经发生及学习记忆的影响 | 第49-68页 |
| 3.1 材料方法 | 第50-54页 |
| 3.1.1 试剂和抗体 | 第50页 |
| 3.1.2 原代小鼠海马细胞培养 | 第50页 |
| 3.1.3 细胞活性检测 | 第50页 |
| 3.1.4 动物试验设计 | 第50-51页 |
| 3.1.5 动物取材与切片 | 第51页 |
| 3.1.6 病理组织学观察（H&E染色） | 第51-52页 |
| 3.1.7 齿状回中干细胞数增殖数量统计 | 第52页 |
| 3.1.8 齿状回中新生神经元数量统计 | 第52页 |
| 3.1.9 细胞存活和分化 | 第52页 |
| 3.1.10 免疫印迹杂交 | 第52页 |
| 3.1.11 水迷宫试验 | 第52页 |
| 3.1.12 RT-PCR实时定量 | 第52-54页 |
| 3.1.13 数据分析 | 第54页 |
| 3.2 结果 | 第54-65页 |
| 3.2.1 锂预处理能显著抑制铅引起的体重降低和肝脏，脾脏和肾脏的重量升高 | 第54页 |
| 3.2.2 锂能保护铅对脾脏、肝脏和肾脏的毒性 | 第54-56页 |
| 3.2.3 锂能保护铅对细胞的毒性 | 第56-57页 |
| 3.2.4 锂预处理能保护铅对海马干细胞和新生神经元的毒性 | 第57-59页 |
| 3.2.5 锂预处理能抑制铅对细胞的存活和分化的损伤 | 第59-61页 |
| 3.2.6 锂可以保护铅引起的学习与记忆障碍 | 第61-62页 |
| 3.2.7 铅和锂相互影响GSK-3β 的表达 | 第62页 |
| 3.2.8 氯化锂对丙烯酰胺引起小鼠运动行为障碍有一定的保护作用 | 第62-65页 |
| 3.3 讨论 | 第65-68页 |
| 第四章 亚硝酸盐抑制小鼠成体神经发生 | 第68-76页 |
| 4.1 材料方法 | 第68-70页 |
| 4.1.1 主要试剂和仪器 | 第68页 |
| 4.1.2 动物分组与BrdU注射 | 第68-69页 |
| 4.1.3 动物取材与切片 | 第69页 |
| 4.1.4 BrdU-DAB免疫组织化学染色 | 第69页 |
| 4.1.5 BrdU/NeuN/GFAP三标免疫荧光染色 | 第69页 |
| 4.1.6 数据统计分析 | 第69-70页 |
| 4.2 结果 | 第70-75页 |
| 4.2.1 亚硝酸盐对小鼠体重及各脏器重量无显著影响 | 第70页 |
| 4.2.2 亚硝酸盐中毒抑制小鼠海马中成体神经干细胞的增殖 | 第70-71页 |
| 4.2.3 亚硝酸盐降低小鼠海马新生细胞存活率 | 第71-72页 |
| 4.2.4 亚硝酸盐对小鼠海马新生细胞分化和迁移方向的影响 | 第72-75页 |
| 4.3 讨论 | 第75-76页 |
| 结论 | 第76-77页 |
| 参考文献 | 第77-89页 |
| 常用缩略词 | 第89-90页 |
| 致谢 | 第90-91页 |
| 作者简介 | 第91-92页 |
