中文摘要 | 第4-7页 |
Abstract | 第7-8页 |
缩略语/符号说明 | 第11-13页 |
前言 | 第13-15页 |
研究现状、成果 | 第13-14页 |
研究目的、方法 | 第14-15页 |
1. 对象和方法 | 第15-22页 |
1.1 实验材料 | 第15-17页 |
1.1.1 实验动物 | 第15页 |
1.1.2 试剂与器材 | 第15-17页 |
1.2 实验方法 | 第17-22页 |
1.2.1 实验动物分组 | 第17页 |
1.2.2 新生大鼠缺氧缺血性脑损伤模型的建立 | 第17页 |
1.2.3 各组动物处理 | 第17页 |
1.2.4 RNA的提取与检测 | 第17-19页 |
1.2.5 逆转录反应合成cDNA | 第19-20页 |
1.2.6 Real-time PCR检测D2、D3表达水平 | 第20-21页 |
1.2.7 PCR反应特异性鉴定 | 第21页 |
1.2.8 数据的收集及处理 | 第21-22页 |
1.3 统计学分析 | 第22页 |
2. 结果 | 第22-61页 |
2.1 实验动物行为表现 | 第22页 |
2.2 脑大体形态肉眼观 | 第22-23页 |
2.3 总RNA提取质量鉴定 | 第23页 |
2.4 PCR反应的特异性鉴定 | 第23-25页 |
2.5 D2 mRNA表达水平 | 第25-43页 |
2.5.1 D2 mRNA表达水平的空间特异性 | 第25-31页 |
2.5.2 D2 mRNA表达水平的时间特异性 | 第31-39页 |
2.5.3 缺氧对D2 mRNA表达水平的影响 | 第39-43页 |
2.6 D3 mRNA表达水平 | 第43-61页 |
2.6.1 D3 mRNA表达水平的空间特异性 | 第43-49页 |
2.6.2 D3 mRNA表达水平的时间特异性 | 第49-57页 |
2.6.3 缺氧对D3 mRNA表达水平的影响 | 第57-61页 |
3. 讨论 | 第61-77页 |
3.1 新生大鼠缺氧缺血性脑损伤模型的建立 | 第61-62页 |
3.2 TH的作用、调控及对CNS的影响 | 第62-63页 |
3.3 脱碘酶的结构特点、生物学特性及调控因素 | 第63-77页 |
3.3.1 D1 | 第64页 |
3.3.2 D2 | 第64-71页 |
3.3.3 D3 | 第71-77页 |
结论 | 第77-78页 |
参考文献 | 第78-88页 |
发表论文和参加科研情况说明 | 第88-89页 |
综述 | 第89-104页 |
综述参考文献 | 第98-104页 |
致谢 | 第104页 |