| 学位论文数据集 | 第3-4页 |
| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 第一章 绪论 | 第18-32页 |
| 1.1 环境微生物研究的现状 | 第18-21页 |
| 1.1.1 环境微生物学简介 | 第18页 |
| 1.1.2 环境微生物学主要研究对象 | 第18-20页 |
| 1.1.2.1 自然界的微生物群落结构及其演变 | 第18-19页 |
| 1.1.2.2 废水处理过程中污泥微生物群落结构及其演变 | 第19页 |
| 1.1.2.3 餐厨垃圾处理过程中污泥微生物群落结构及其演变 | 第19-20页 |
| 1.1.3 环境微生物群落结构特点 | 第20页 |
| 1.1.4 传统环境微生物群落结构研究方法存在的问题 | 第20-21页 |
| 1.2 分子生物学技术在污泥微生态研究方面的应用 | 第21-25页 |
| 1.2.1 分子生物学技术简介 | 第21页 |
| 1.2.2 分子生物学在环境微生物研究中的应用 | 第21-22页 |
| 1.2.3 用于污泥微生态研究的分子生物学技术难点 | 第22-23页 |
| 1.2.3.1 污泥样品DNA的获取 | 第22页 |
| 1.2.3.2 PCR误差 | 第22-23页 |
| 1.2.4 PCR-DGGE技术在污泥微生态研究方面的应用 | 第23-24页 |
| 1.2.5 454-焦磷酸高通量测序技术在污泥微生态研究中的应用 | 第24-25页 |
| 1.2.6 污泥微生态群落结构研究的其他常用分子生物学技术 | 第25页 |
| 1.3 污泥微生物群落结构研究的相关简介 | 第25-29页 |
| 1.3.1 好氧颗粒污泥的快速培养 | 第25-27页 |
| 1.3.2 厌氧折流板反应器处理餐厨废水 | 第27-28页 |
| 1.3.3 厌氧消化产甲烷 | 第28-29页 |
| 1.4 本课题目的、意义及研究思路 | 第29-32页 |
| 第二章 基于PCR-DGGE的好氧颗粒污泥制备和应用过程中菌群变化分析 | 第32-46页 |
| 2.1 引言 | 第32页 |
| 2.2 实验材料与方法 | 第32-36页 |
| 2.2.1 实验试剂与仪器 | 第32-34页 |
| 2.2.2 实验分析方法 | 第34-36页 |
| 2.2.2.1 污泥样品的获取 | 第34页 |
| 2.2.2.2 污泥总DNA提取方法 | 第34页 |
| 2.2.2.3 目标片段的PCR扩增 | 第34-35页 |
| 2.2.2.4 DGGE | 第35页 |
| 2.2.2.5 条带分离与测序 | 第35-36页 |
| 2.2.2.6 图谱分析 | 第36页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第36-43页 |
| 2.3.1 制备好氧颗粒污泥过程菌群变化分析 | 第36-40页 |
| 2.3.1.1 制备过程中污泥样品DNA提取结果及PCR扩增结果 | 第36-37页 |
| 2.3.1.2 制备过程中污泥样品DGGE图谱分析 | 第37-39页 |
| 2.3.1.3 制备过程中污泥样品优势菌分析 | 第39-40页 |
| 2.3.2 SBR异常状态下的菌群分析 | 第40-42页 |
| 2.3.3 好氧颗粒污泥降解苯胺过程中菌群变化 | 第42-43页 |
| 2.3.3.1 降解苯胺过程样品DNA提取结果及PCR扩增结果 | 第42-43页 |
| 2.3.3.2 降解苯胺过程DGGE结果 | 第43页 |
| 2.4 本章小结 | 第43-46页 |
| 第三章 基于PCR-DGGE的A/OBR各隔室菌群分析 | 第46-58页 |
| 3.1 引言 | 第46页 |
| 3.2 实验材料与方法 | 第46-48页 |
| 3.2.1 实验试剂与仪器 | 第46页 |
| 3.2.2 实验分析方法 | 第46-48页 |
| 3.2.2.1 污泥样品的获取 | 第46-48页 |
| 3.2.2.2 污泥总DNA提取方法 | 第48页 |
| 3.2.2.3 目标片段的PCR扩增 | 第48页 |
| 3.2.2.4 DGGE | 第48页 |
| 3.2.2.5 条带分离与测序 | 第48页 |
| 3.2.2.6 图谱分析 | 第48页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第48-55页 |
| 3.3.1 以单口进料方式进料的各隔室菌群结构 | 第48-51页 |
| 3.3.1.1 以单口进料方式进料的各隔室样品DNA提取及PCR结果 | 第48-49页 |
| 3.3.1.2 以单口进料方式进料的各隔室不同时间段DGGE分析 | 第49-51页 |
| 3.3.2 以6：3：1方式进料的各隔室菌群结构 | 第51-53页 |
| 3.3.2.1 以6：3：1方式进料的各隔室样品DNA提取及PCR结果 | 第51-52页 |
| 3.3.2.2 以6：3：1方式进料的各隔室不同时间段DGGE | 第52-53页 |
| 3.3.3 以6：2：2方式进料的各隔室菌群结构 | 第53-55页 |
| 3.3.3.1 以6：2：2方式进料的各隔室样品DNA提取及PCR结果 | 第53-54页 |
| 3.3.3.2 以6：2：2方式进料的各隔室不同时间段DGGE | 第54-55页 |
| 3.3.4 三种进料方式对比 | 第55页 |
| 3.4 本章小结 | 第55-58页 |
| 第四章 基于PCR-DGGE的厌氧消化过程菌群分析 | 第58-72页 |
| 4.1 引言 | 第58-59页 |
| 4.2 实验材料与方法 | 第59-60页 |
| 4.2.1 实验试剂与仪器 | 第59页 |
| 4.2.2 实验分析方法 | 第59-60页 |
| 4.2.2.1 污泥样品的获取 | 第59页 |
| 4.2.2.2 污泥总DNA提取方法 | 第59页 |
| 4.2.2.3 目标片段的PCR扩增 | 第59-60页 |
| 4.2.2.4 DGGE | 第60页 |
| 4.2.2.5 条带分离与测序 | 第60页 |
| 4.2.2.6 图谱分析 | 第60页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第60-70页 |
| 4.3.1 添加物对厌氧消化体系菌群结构的影响 | 第60-65页 |
| 4.3.1.1 厌氧消化各阶段样品DNA提取及PCR结果 | 第60-61页 |
| 4.3.1.2 厌氧消化各阶段样品DGGE结果 | 第61-62页 |
| 4.3.1.3 细菌图谱测序结果 | 第62-63页 |
| 4.3.1.4 厌氧消化各阶段样品古细菌PCR结果 | 第63-64页 |
| 4.3.1.5 厌氧消化各阶段样品古细菌DGGE结果 | 第64-65页 |
| 4.3.1.6 古细菌图谱测序结果 | 第65页 |
| 4.3.2 添加物对实际餐厨垃圾厌氧消化体系菌群结构的影响 | 第65-70页 |
| 4.3.2.1 实际餐厨厌氧消化各阶段样品DNA提取及PCR结果 | 第65-66页 |
| 4.3.2.2 实际餐厨厌氧消化各阶段样品DGGE结果 | 第66-68页 |
| 4.3.2.3 厌氧消化各阶段样品古细菌PCR结果 | 第68-69页 |
| 4.3.2.4 厌氧消化各阶段样品古细菌DGGE结果 | 第69-70页 |
| 4.4 本章小结 | 第70-72页 |
| 第五章 高通量测序分析添加物对厌氧消化体系菌群的影响 | 第72-84页 |
| 5.1 引言 | 第72页 |
| 5.2 实验材料与方法 | 第72-74页 |
| 5.2.1 实验试剂与仪器 | 第72页 |
| 5.2.2 实验分析方法 | 第72-74页 |
| 5.2.2.1 高通量测序 | 第72-73页 |
| 5.2.2.2 测序结果处理 | 第73-74页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第74-81页 |
| 5.3.1 16S rRNA gene高通量测序结果评估 | 第74-76页 |
| 5.3.2 细菌群落分析 | 第76-80页 |
| 5.3.3 古细菌群落分析 | 第80-81页 |
| 5.3.4 高通量测序与PCR-DGGE技术对于微生物群落鉴定的对比 | 第81页 |
| 5.4 本章小结 | 第81-84页 |
| 第六章 结论 | 第84-86页 |
| 第七章 问题与建议 | 第86-88页 |
| 参考文献 | 第88-94页 |
| 致谢 | 第94-96页 |
| 研究成果及发表的学术论文 | 第96-98页 |
| 作者和导师简介 | 第98-100页 |
| 附表 | 第100-101页 |
