前言 | 第4-7页 |
中文摘要 | 第7-10页 |
Abstract | 第10-13页 |
英文缩写词表 | 第16-18页 |
第一章 综述 | 第18-32页 |
1.1 TRAIL 的文献综述 | 第18-23页 |
1.1.1 TRAIL结构与功能 | 第18-19页 |
1.1.2 TRAIL/TRAILR作用的途径 | 第19-20页 |
1.1.3 TRAIL在呼吸系统疾病中的作用 | 第20-23页 |
1.2 本实验研究背景 | 第23-32页 |
1.2.1 特发性肺纤维化发病机制的研究进展 | 第23-28页 |
1.2.2 特发性肺纤维化增加肺癌发病危险性的机制研究进展 | 第28-29页 |
1.2.3 TRAIL及其下游信号通路 MID1、PP2A 与肺纤维化的关系 | 第29-32页 |
第二章 TRAIL 及其信号传递途径在博莱霉素诱导的 BALB/C 小鼠肺纤维化模型中的作用研究 | 第32-62页 |
2.1 实验材料 | 第32-33页 |
2.1.1 主要试剂 | 第32-33页 |
2.1.2 主要实验仪器 | 第33页 |
2.1.3 实验动物 | 第33页 |
2.2 实验方法 | 第33-43页 |
2.2.1 小鼠肺纤维化模型的建立及给药 | 第33-35页 |
2.2.2 小鼠肺功能检测 | 第35-36页 |
2.2.3 HE染色方法 | 第36-37页 |
2.2.4 Masson三色染色方法 | 第37页 |
2.2.5 TUNEL染色方法 | 第37-38页 |
2.2.6 博莱霉素诱导小鼠模型肺间质病变评定方法 | 第38-39页 |
2.2.7 mRNA表达水平的检测 | 第39-41页 |
2.2.8 目标因子蛋白水平检测 | 第41-43页 |
2.2.9 统计学分析 | 第43页 |
2.3 实验结果 | 第43-57页 |
2.3.1 博莱霉素诱导 BALB/c 小鼠肺纤维化模型的建立(实验设计一,见实验方法) | 第43-47页 |
2.3.2 TRAIL及其信号传递途径参与博莱霉素诱导的 BALB/c 小鼠肺纤维化的形成(实验设计二) | 第47-55页 |
2.3.3 PP2A激活剂(AALs)对博莱霉素诱导的肺纤维化小鼠的影响 | 第55-57页 |
2.4 讨论 | 第57-62页 |
第三章 RTRAIL 及 AALS 对 BALB/C 小鼠原代肺成纤维细胞增殖影响的研究 | 第62-70页 |
3.1 实验材料 | 第62-63页 |
3.1.1 实验动物 | 第62页 |
3.1.2 药品及试剂 | 第62页 |
3.1.3 主要仪器 | 第62-63页 |
3.2 实验方法 | 第63-67页 |
3.2.1 小鼠原代肺成纤维细胞的培养 | 第63-64页 |
3.2.2 MTT法检测细胞增殖情况 | 第64-65页 |
3.2.3 mRNA表达水平的检测 | 第65-67页 |
3.3 实验结果 | 第67-69页 |
3.3.1 rTRAIL与 AAL 对小鼠肺原代成纤维细胞增殖的影响 | 第67-68页 |
3.3.2 rTRAIL及 AALs 对小鼠肺原代成纤维细胞在 mRNA 水平上的影响 | 第68-69页 |
3.4 讨论 | 第69-70页 |
第四章 TRAIL 及其信号传递途径在 IPF 患者肺纤维化形成中作用的研究 | 第70-78页 |
4.1 实验材料 | 第70-71页 |
4.1.1 主要试剂 | 第70-71页 |
4.1.2 标本来源 | 第71页 |
4.2 实验方法 | 第71-73页 |
4.2.1 目标因子蛋白水平检测 | 第71-73页 |
4.2.2 统计学分析 | 第73页 |
4.3 实验结果 | 第73-76页 |
4.3.1 IPF患者与正常对照组一般资料的特点 | 第73-74页 |
4.3.2 IPF患者血清中 TRAIL 表达情况及其与肺功能的关系 | 第74-75页 |
4.3.3 IPF患者肺组织中 MID1 表达情况及其与肺功能的关系 | 第75页 |
4.3.4 IPF患者血清 TRAIL 与肺组织中 MID1 的相关性 | 第75-76页 |
4.3.5 IPF患者肺组织中 PP2Ac 总蛋白含量及 PP2A 磷酸化活性表达情况 | 第76页 |
4.4 讨论 | 第76-78页 |
第五章 结论 | 第78-80页 |
参考文献 | 第80-88页 |
作者简介 | 第88-90页 |
攻读博士期间发表的学术论文及其他成果文章 | 第90-92页 |
致谢 | 第92页 |