| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 第1章 绪论 | 第14-22页 |
| 1.1 引言 | 第14页 |
| 1.2 纳米颗粒药物递送的研究现状 | 第14-16页 |
| 1.3 CD40分子研究现状 | 第16-18页 |
| 1.4 移植免疫排斥的机制与研究现状 | 第18-19页 |
| 1.5 RNA干扰药物研究现状 | 第19-21页 |
| 1.6 本实验的研究目的与内容 | 第21-22页 |
| 第2章 材料与方法 | 第22-37页 |
| 2.1 实验材料 | 第22-27页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第22页 |
| 2.1.2 细胞系 | 第22页 |
| 2.1.3 主要试剂 | 第22-24页 |
| 2.1.4 主要仪器与器材 | 第24-25页 |
| 2.1.5 siRNA序列 | 第25-26页 |
| 2.1.6 主要试剂的配方 | 第26-27页 |
| 2.2 实验方法 | 第27-35页 |
| 2.2.1 PEG_(5k)-PLGA_(10k)纳米颗粒的合成 | 第27-28页 |
| 2.2.2 PEG_(5k)-PLGA_(10k)纳米颗粒粒径和表面电势的测定 | 第28页 |
| 2.2.3 PEG_(5k)-PLGA_(10k)纳米颗粒冷冻透射电镜形貌观察 | 第28页 |
| 2.2.4 DC1.2、RAW264.7 细胞培养与传代 | 第28-29页 |
| 2.2.5 激光共聚焦显微镜观察PLGA/Cy5-siRNA NPs向细胞内递送Cy5-siRNA | 第29页 |
| 2.2.6 流式细胞术检测PLGA/FAM-siRNA NPs向细胞内递送FAM-siRNA | 第29-30页 |
| 2.2.7 流式细胞术检测PLGA/siCD40 NPs对细胞CD40表达水平的影响 | 第30页 |
| 2.2.8 qPCR检测PLGA/siCD40 NPs对细胞CD40表达水平的影响 | 第30-31页 |
| 2.2.9 流式细胞术检测PLGA/siCD40 NPs纳米颗粒对骨髓诱导树突状细胞活化的影响 | 第31-32页 |
| 2.2.10 流式细胞术检测PLGA/Cy5-siRNA NPs在C57BL/6 小鼠体内分布 | 第32-33页 |
| 2.2.11 流式细胞术检测PLGA/siCD40 NPs对小鼠体内树突状细胞比例的影响 | 第33-34页 |
| 2.2.12 流式细胞术检测PLGA/siCD40 NPs对骨髓诱导树突状细胞的分化及其活化的影响 | 第34-35页 |
| 2.2.13 PLGA/siCD40 NPs小鼠皮肤移植模型实验 | 第35页 |
| 2.3 统计学分析 | 第35-37页 |
| 第3章 结果与讨论 | 第37-55页 |
| 3.1 双乳化法制备PEG_(5k)-PLGA_(10k)纳米颗粒 | 第37-38页 |
| 3.2 PEG_(5k)-PLGA_(10k)纳米颗粒的粒径和表面电势 | 第38-39页 |
| 3.3 PEG_(5k)-PLGA_(10k)纳米颗粒冷冻透射电镜形貌观察 | 第39-40页 |
| 3.4 PEG_(5k)-PLGA_(10k)纳米颗粒在体外递送siRNA进入细胞 | 第40-42页 |
| 3.5 PLGA/siCD40 NPs在体外降低细胞CD40的表达 | 第42-45页 |
| 3.6 PLGA/siCD40 NPs抑制骨髓诱导树突状细胞的活化 | 第45-47页 |
| 3.7 PLGA/Cy5-siRNA NPs在体内向树突状细胞和巨噬细胞递送siRNA | 第47-49页 |
| 3.8 PLGA/siCD40 NPs降低小鼠体内树突状细胞的比例 | 第49-50页 |
| 3.9 PLGA/siCD40 NPs抑制骨髓诱导树突状细胞的分化及其活化 | 第50-51页 |
| 3.10 PLGA/siCD40 NPs延长小鼠同种异型皮肤移植物的存活时间 | 第51-53页 |
| 3.11 小结 | 第53-55页 |
| 第4章 结论 | 第55-56页 |
| 参考文献 | 第56-63页 |
| 作者简介及在学期间所取得的科研成果 | 第63-64页 |
| 致谢 | 第64页 |
