| 缩略语表 | 第5-7页 |
| 中文摘要 | 第7-10页 |
| 英文摘要 | 第10-13页 |
| 前言 | 第14-16页 |
| 文献回顾 | 第16-50页 |
| 一、组织工程 | 第16-29页 |
| 二、神经再生组织工程 | 第29-42页 |
| 三、平滑肌再生组织工程 | 第42-50页 |
| 第一部分 DPSCs不同克隆间分离和比较 | 第50-62页 |
| 实验一 不同DPSCs克隆的分离、培养 | 第50-52页 |
| 1 材料 | 第50-51页 |
| 2 方法 | 第51-52页 |
| 3 结果 | 第52页 |
| 实验二 不同DPSCs克隆间增殖能力的比较 | 第52-53页 |
| 1 材料 | 第52页 |
| 2 方法 | 第52页 |
| 3 结果 | 第52-53页 |
| 实验三 不同DPSCs克隆间多向分化潜能的比较 | 第53-56页 |
| 1 材料 | 第53页 |
| 2 方法 | 第53-54页 |
| 3 结果 | 第54-56页 |
| 实验四 不同DPSCs克隆间MSCs表面标记物表达的比较 | 第56-58页 |
| 1 材料 | 第56页 |
| 2 方法 | 第56-57页 |
| 3 结果 | 第57-58页 |
| 实验五 DPSCs克隆A32的鉴定 | 第58-60页 |
| 1 材料 | 第58页 |
| 2 方法 | 第58-59页 |
| 3 结果 | 第59-60页 |
| 第一部分讨论 | 第60-62页 |
| 第二部分 DPSCs A32克隆在平滑肌组织工程方面的研究和应用 | 第62-93页 |
| 实验一 SMCs的分离、鉴定 | 第62-64页 |
| 1 材料 | 第62-63页 |
| 2 方法 | 第63页 |
| 3 结果 | 第63-64页 |
| 实验二 未分化DPSCs A32克隆SMCs表面标记物的表达 | 第64-67页 |
| 1 材料 | 第64页 |
| 2 方法 | 第64-65页 |
| 3 结果 | 第65-66页 |
| 4 讨论 | 第66-67页 |
| 实验三 SMCs体外诱导培养液条件筛选 | 第67-70页 |
| 1 材料 | 第67页 |
| 2 方法 | 第67-68页 |
| 3 结果 | 第68-69页 |
| 4 讨论 | 第69-70页 |
| 实验四 体外诱导DPSCs A32克隆分化为SMCs样细胞 | 第70-75页 |
| 1 材料 | 第70页 |
| 2 方法 | 第70-71页 |
| 3 结果 | 第71-74页 |
| 4 讨论 | 第74-75页 |
| 实验五 体外诱导DPSCs A32克隆分化为平滑肌层样细胞 | 第75-77页 |
| 1 材料 | 第75页 |
| 2 方法 | 第75页 |
| 3 结果 | 第75-76页 |
| 4 讨论 | 第76-77页 |
| 实验六 经典Wnt通路（Wnt/β-catenin信号转导通路）参与调控DPSCs A32克隆向SMCs分化 | 第77-82页 |
| 1 材料 | 第77页 |
| 2 方法 | 第77-78页 |
| 3 结果 | 第78-81页 |
| 4 讨论 | 第81-82页 |
| 实验七 经典Wnt通路通过调控生长因子表达，参与调控DPSCs A32克隆向SMCs分化研究 | 第82-88页 |
| 一、生长因子(TGF-β1、HGF、VEGF、PDGF-BB、bFGF、EGF)参与调控DPSCs A32克隆向SMCs分化 | 第82-85页 |
| 1 材料 | 第82-83页 |
| 2 方法 | 第83-84页 |
| 3 结果 | 第84-85页 |
| 二、经典Wnt通路通过调控生长因子(TGF-β1、HGF、VEGF、PDGF-BB) 的表达，促进DPSCs A32克隆向SMCs分化 | 第85-86页 |
| 1 材料 | 第85页 |
| 2 方法 | 第85页 |
| 3 结果 | 第85-86页 |
| 三、讨论 | 第86-88页 |
| 实验八 经典Wnt通路通过调控生长因子(bFGF、EGF)的表达， 维持DPSCs A32克隆的干细胞特性分析 | 第88-93页 |
| 一、DPSCs A32克隆向SMCs分化过程中干性基因Nanog、Sox2、Oct4的检测 | 第88-89页 |
| 1 材料 | 第88页 |
| 2 方法 | 第88-89页 |
| 3 结果 | 第89页 |
| 二、经典Wnt通路通过调控生长因子bFGF、EGF的表达， 维持DPSCs A32克隆的干细胞特性 | 第89-91页 |
| 1 材料 | 第89-90页 |
| 2 方法 | 第90页 |
| 3 结果 | 第90-91页 |
| 三、讨论 | 第91-93页 |
| 第三部分 DPSCs A32克隆在神经再生组织工程方面的研究和应用 | 第93-107页 |
| 实验一 未分化的DPSCs A32克隆神经表面标记物的表达 | 第94-96页 |
| 1 材料 | 第94页 |
| 2 方法 | 第94页 |
| 3 结果 | 第94-95页 |
| 4 讨论 | 第95-96页 |
| 实验二 体外诱导DPSCs A32克隆向神经方向分化 | 第96-103页 |
| 一、体外诱导DPSCs A32克隆分化为神经球状的NSCs | 第96-98页 |
| 1 材料 | 第96页 |
| 2 方法 | 第96-97页 |
| 3 结果 | 第97-98页 |
| 二、体外进一步诱导已分化为神经球状的A32向成熟神经元细胞分化 | 第98-102页 |
| 1 材料 | 第98页 |
| 2 方法 | 第98-99页 |
| 3 结果 | 第99-102页 |
| 三、讨论 | 第102-103页 |
| 实验三 体外诱导DPSCs A32克隆向神经分化过程中，生长因子和神经营养因子的检测与分析 | 第103-107页 |
| 1 材料 | 第103-104页 |
| 2 方法 | 第104-105页 |
| 3 结果 | 第105页 |
| 4 讨论 | 第105-107页 |
| 小结 | 第107-108页 |
| 参考文献 | 第108-126页 |
| 个人简历和研究成果 | 第126-128页 |
| 致谢 | 第128页 |
