缩略语表 | 第5-6页 |
中文摘要 | 第6-8页 |
英文摘要 | 第8-10页 |
前言 | 第11-12页 |
文献回顾 | 第12-23页 |
1. 颞下颌关节与生物力 | 第12-14页 |
1.1 颞下颌关节髁突软骨 | 第12-13页 |
1.2 髁突软骨与生物力 | 第13-14页 |
2. 颞下颌关节紊乱病 | 第14-18页 |
2.1 颞下颌关节紊乱病与异常咬合 | 第15-16页 |
2.2 颞下颌关节骨关节炎的实验方法 | 第16-18页 |
3. Hh信号通路 | 第18-23页 |
3.1 Ihh与软骨细胞的增殖分化 | 第20-21页 |
3.2 Ihh与TMJ生物力学 | 第21-23页 |
第一部分 建立SD大鼠TMJ-OA动物模型 | 第23-32页 |
1 材料 | 第24页 |
1.1 实验动物的选择与分组 | 第24页 |
2 方法 | 第24-26页 |
2.1 建立SD大鼠TMJ-OA动物模型实验的操作方法 | 第24-25页 |
2.2 大体观察 | 第25页 |
2.3 苏木精-伊红(HE)染色 | 第25-26页 |
2.4 统计方法 | 第26页 |
3 结果 | 第26-29页 |
3.1 大体观察结果 | 第26-27页 |
3.2 苏木精-伊红(HE)染色结果 | 第27-29页 |
3.3 髁突全层软骨厚度微观测量结果 | 第29页 |
4 讨论 | 第29-31页 |
5 结论 | 第31-32页 |
第二部分 蛋白及基因水平检测Ihh及受体在TMJ-OA髁突组织的变化 | 第32-45页 |
1 材料 | 第32-33页 |
1.1 实验动物的选择与分组 | 第32-33页 |
2 方法 | 第33-36页 |
2.1 SD大鼠TMJ-OA动物模型实验的操作方法 | 第33页 |
2.2 免疫组化染色 | 第33-34页 |
2.3 Real Time-PCR检测 | 第34-36页 |
2.4 统计方法 | 第36页 |
3 结果 | 第36-43页 |
3.1 Ihh蛋白水平的表达 | 第36-37页 |
3.2 Smo蛋白水平的表达 | 第37页 |
3.3 Ptc1蛋白水平的表达 | 第37页 |
3.4 Ihh mRNA水平的表达 | 第37页 |
3.5 Smo mRNA水平的表达 | 第37页 |
3.6 Ptc1 mRNA水平的表达 | 第37-43页 |
4 讨论 | 第43-44页 |
5 结论 | 第44-45页 |
小结 | 第45-46页 |
参考文献 | 第46-59页 |
个人简历和研究成果 | 第59-60页 |
致谢 | 第60页 |