| 摘要 | 第4-5页 |
| abstract | 第5-6页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-24页 |
| 1.1 耐药基因及其水环境污染 | 第11-12页 |
| 1.1.1 环境中抗生素存在现状及危害 | 第11页 |
| 1.1.2 耐药基因对水环境的污染现状 | 第11-12页 |
| 1.2 UV与臭氧消毒研究进展 | 第12-15页 |
| 1.2.1 紫外对细菌,耐药基因灭活规律及作用机制 | 第12-14页 |
| 1.2.2 臭氧对细菌灭活规律及作用机制的研究进展 | 第14-15页 |
| 1.3 损伤E.COLI的检测 | 第15-18页 |
| 1.3.1 水环境中损伤E. coli的研究进展 | 第15-16页 |
| 1.3.2 E. coli检测方法研究进展 | 第16-18页 |
| 1.4 研究路线与目标 | 第18-24页 |
| 1.4.1 水环境ARGs的水平转移和传播的研究现状及存在问题 | 第18-20页 |
| 1.4.2 研究路线及意义 | 第20-24页 |
| 第二章 UV消毒对ARB和ARGS的影响 | 第24-50页 |
| 2.1 引言 | 第24页 |
| 2.2 材料与方法 | 第24-41页 |
| 2.2.1 实验对象与材料 | 第24-33页 |
| 2.2.1.1 实验对象 | 第24-26页 |
| 2.2.1.2 仪器设备和材料 | 第26-27页 |
| 2.2.1.3 主要试剂、培养基和溶液 | 第27-30页 |
| 2.2.1.4 主要培养基配制 | 第30-32页 |
| 2.2.1.5 主要溶液配制 | 第32-33页 |
| 2.2.2 实验方法 | 第33-41页 |
| 2.2.2.1 质粒的提取和纯化 | 第33页 |
| 2.2.2.2 抗生素耐药菌的构建 | 第33-34页 |
| 2.2.2.3 转化结果的验证 | 第34-36页 |
| 2.2.2.4 UV消毒实验 | 第36-37页 |
| 2.2.2.5 紫外对耐药菌消毒效果评价 | 第37页 |
| 2.2.2.6 损伤菌计算方法 | 第37页 |
| 2.2.2.7 UV消毒对耐药基因影响的研究 | 第37-41页 |
| 2.3 数据统计与分析 | 第41-42页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第42-50页 |
| 2.4.1 UV对耐药菌E. coli 25922(RP4)的消毒 | 第42-45页 |
| 2.4.1.1 UV消毒耐药菌E. coli 25922(RP4)的灭活效果评价 | 第42-43页 |
| 2.4.1.2 UV消毒耐药质粒RP4的影响 | 第43-45页 |
| 2.4.2 UV对其它耐药致病菌的消毒 | 第45-46页 |
| 2.4.2.1 不同剂量下UV消毒五种耐药菌 | 第45-46页 |
| 2.4.2.2 UV消毒对5种耐药菌的杀灭效果比较及其损伤细菌的形成 | 第46页 |
| 2.4.3 UV消毒对含不同质粒的耐药菌灭活效果的比较 | 第46-48页 |
| 2.4.4 讨论 | 第48-50页 |
| 第三章 UV消毒损伤细菌性质的初步研究 | 第50-68页 |
| 3.1 引言 | 第50-51页 |
| 3.2 材料与方法 | 第51-55页 |
| 3.2.1 实验对象与材料 | 第51-52页 |
| 3.2.1.1 实验对象 | 第51页 |
| 3.2.1.2 仪器设备 | 第51页 |
| 3.2.1.3 主要试剂 | 第51-52页 |
| 3.2.1.4 主要溶液的配制 | 第52页 |
| 3.2.2 实验方法 | 第52-55页 |
| 3.2.2.1 损伤菌悬液(10~8 CFU/ml)制备 | 第52-53页 |
| 3.2.2.2 计数消毒损伤菌和计算损伤率 | 第53页 |
| 3.2.2.3 电镜观察消毒损伤菌 | 第53页 |
| 3.2.2.3 消毒损伤菌的拉曼光谱分析 | 第53-54页 |
| 3.2.2.4 β-半乳糖苷酶活性的检测 | 第54页 |
| 3.2.2.5 细菌抗氧化系统指标的测定 | 第54-55页 |
| 3.3 数据统计与分析 | 第55页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第55-68页 |
| 3.4.1 损伤菌细胞膜的形态学观测 | 第55-63页 |
| 3.4.1.1 UV消毒致P .aeruginosa 27853 损伤菌的电镜观察 | 第55-57页 |
| 3.4.1.2 UV消毒致E. coli 25922 损伤菌的电镜观察 | 第57-59页 |
| 3.4.1.3 UV消毒致Salmonell 50312 损伤菌的电镜观察 | 第59-60页 |
| 3.4.1.4 UV消毒致E. faecalis 33186 损伤菌的电镜观察 | 第60-62页 |
| 3.4.1.5 UV消毒S.aureus 6538 损伤菌的电镜观察 | 第62-63页 |
| 3.4.2 UV消毒E. coli 25922 损伤菌的拉曼光谱分析 | 第63-64页 |
| 3.4.3 β-半乳糖苷酶活性检测 | 第64-65页 |
| 3.4.4 抗氧化酶系统的测定 | 第65-66页 |
| 3.4.5 讨论 | 第66-68页 |
| 第四章 臭氧损伤E. COLI的检测 | 第68-77页 |
| 4.1 引言 | 第68页 |
| 4.2 材料与方法 | 第68-73页 |
| 4.2.1 实验对象与材料 | 第68-70页 |
| 4.2.1.1 研究对象 | 第68-69页 |
| 4.2.1.2 仪器设备 | 第69页 |
| 4.2.1.3 材料试剂 | 第69-70页 |
| 4.2.1.4 主要试剂配制 | 第70页 |
| 4.2.2 实验方法 | 第70-73页 |
| 4.2.2.1 细菌菌悬液的制备 | 第70页 |
| 4.2.2.2 臭氧消毒损伤E. coli的制备 | 第70-72页 |
| 4.2.2.3 损伤E. coli的培养与计数 | 第72页 |
| 4.2.2.4 SOD酶活性测试 | 第72页 |
| 4.2.2.5 不同方法检测E. coli | 第72-73页 |
| 4.2.2.6 E. coli损伤率的计算 | 第73页 |
| 4.2.2.7 不同方法对损伤E. coli的检出率计算 | 第73页 |
| 4.3 数据处理 | 第73-74页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第74-77页 |
| 4.4.1 不同方法对正常E.coli的检测 | 第74页 |
| 4.4.2 不同方法对损伤E.coli K12的检测 | 第74-75页 |
| 4.4.4 讨论 | 第75-77页 |
| 第五章 游离ARGS转化UV消毒损伤菌条件及影响因素的研究 | 第77-95页 |
| 5.1 引言 | 第77-78页 |
| 5.2 材料与方法 | 第78-82页 |
| 5.2.1 实验对象与材料 | 第78-80页 |
| 5.2.1.1 实验对象 | 第78-79页 |
| 5.2.1.2 仪器设备 | 第79页 |
| 5.2.1.3 主要试剂 | 第79-80页 |
| 5.2.1.4 试剂盒 | 第80页 |
| 5.2.2 实验方法 | 第80-82页 |
| 5.2.2.1 质粒的提取和纯化 | 第80页 |
| 5.2.2.2 受体菌感受态细菌的制备和保存 | 第80页 |
| 5.2.2.3 UV消毒实验 | 第80-81页 |
| 5.2.2.4 自然转化实验 | 第81-82页 |
| 5.2.2.5 转化结果的验证 | 第82页 |
| 5.2.2.6 转化频率的计算 | 第82页 |
| 5.3 数据统计与分析 | 第82页 |
| 5.4 结果与讨论 | 第82-95页 |
| 5.4.1 游离ARGs自然转化UV消毒损伤菌的条件 | 第82-88页 |
| 5.4.1.1 质粒对转化频率的影响 | 第82-85页 |
| 5.4.1.2 损伤菌对转化频率的影响 | 第85-87页 |
| 5.4.1.3 孵育时间对转化频率的影响 | 第87-88页 |
| 5.4.2 水质因素对转化频率的影响 | 第88-92页 |
| 5.4.2.1 温度对转化频率的影响 | 第88页 |
| 5.4.2.2 pH对转化频率的影响 | 第88-89页 |
| 5.4.2.3 氨氮对转化频率的影响 | 第89页 |
| 5.4.2.4 COD_(Mn)对转化频率的影响 | 第89-90页 |
| 5.4.2.5 金属阳离子对转化频率的影响 | 第90-92页 |
| 5.4.3 讨论 | 第92-95页 |
| 第六章 全文结论 | 第95-96页 |
| 参考文献 | 第96-108页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第108-109页 |
| 附录 | 第109-110页 |
| 致谢 | 第110-111页 |
