| 摘要 | 第12-14页 |
| Abstract | 第14-15页 |
| 第一章 文献综述 | 第16-28页 |
| 1.1 水飞蓟 | 第16-19页 |
| 1.1.1 水飞蓟资源概述 | 第16-17页 |
| 1.1.2 水飞蓟油 | 第17页 |
| 1.1.3 水飞蓟蛋白 | 第17页 |
| 1.1.4 水飞蓟素 | 第17-19页 |
| 1.1.5 水飞蓟植株的研究现状 | 第19页 |
| 1.2 黄酮类化合物研究进展 | 第19-25页 |
| 1.2.1 黄酮类化合物的分类与性质 | 第19-20页 |
| 1.2.2 黄酮类化合物的提取 | 第20-22页 |
| 1.2.3 黄酮类化合物的分离纯化 | 第22-23页 |
| 1.2.4 黄酮类化合物的生物活性 | 第23-25页 |
| 1.3 天然抗氧化剂的研究进展 | 第25-26页 |
| 1.3.1 天然抗氧化剂的研究利用 | 第25-26页 |
| 1.3.2 抗氧化活性的评价方法 | 第26页 |
| 1.4 本课题的目的、意义及主要研究内容 | 第26-28页 |
| 1.4.1 研究目的和意义 | 第26-27页 |
| 1.4.2 研究内容 | 第27-28页 |
| 第二章 水飞蓟植株功能性成分测定及其醇提物抗氧化活性研究 | 第28-39页 |
| 2.1 试验材料与仪器 | 第28页 |
| 2.1.1 材料与试剂 | 第28页 |
| 2.1.2 仪器设备 | 第28页 |
| 2.2 试验方法 | 第28-32页 |
| 2.2.1 水飞蓟各部位总黄酮含量的测定 | 第28-29页 |
| 2.2.2 水飞蓟植株中多糖的测定 | 第29-30页 |
| 2.2.3 水飞蓟各部位多酚含量的测定 | 第30页 |
| 2.2.4 水飞蓟植株中蛋白质的测定 | 第30-31页 |
| 2.2.5 水飞蓟植株醇提物的制备 | 第31页 |
| 2.2.6 水飞蓟植株醇提物的清除DPPH活性 | 第31-32页 |
| 2.2.7 水飞蓟植株醇提物的清除羟基活性 | 第32页 |
| 2.2.8 总抗氧化能力测定 | 第32页 |
| 2.3 试验结果与分析 | 第32-37页 |
| 2.3.1 水飞蓟植株各部位总黄酮含量 | 第32-33页 |
| 2.3.2 水飞蓟植株各部位多酚的含量 | 第33页 |
| 2.3.3 水飞蓟植株各部位多糖的含量 | 第33页 |
| 2.3.4 水飞蓟植株各部位蛋白质的含量 | 第33-34页 |
| 2.3.5 水飞蓟植株各部位醇提物清除DPPH活性 | 第34-35页 |
| 2.3.6 水飞蓟植株各部位醇提物清除羟基活性 | 第35-36页 |
| 2.3.7 水飞蓟植株各部位醇提物总抗氧化能力测定 | 第36-37页 |
| 2.4 讨论 | 第37-38页 |
| 2.5 本章小结 | 第38-39页 |
| 第三章 水飞蓟果托总黄酮的提取工艺条件优化 | 第39-51页 |
| 3.1 材料与仪器 | 第39-40页 |
| 3.1.1 材料与试剂 | 第39页 |
| 3.1.2 主要仪器 | 第39-40页 |
| 3.2 试验方法 | 第40-41页 |
| 3.2.1 黄酮标准曲线的绘制 | 第40页 |
| 3.2.2 水飞蓟果托总黄酮提取量的测定方法 | 第40页 |
| 3.2.3 单因素试验设计 | 第40-41页 |
| 3.2.4 响应曲面试验设计 | 第41页 |
| 3.3 结果与分析 | 第41-50页 |
| 3.3.1 不同因素对水飞蓟果托总黄酮提取效果的影响 | 第41-44页 |
| 3.3.2 响应曲面优化试验结果与分析 | 第44-49页 |
| 3.3.3 验证试验 | 第49页 |
| 3.3.4 超声波辅助提取前后电镜扫描对比 | 第49-50页 |
| 3.4 讨论 | 第50页 |
| 3.5 结论 | 第50-51页 |
| 第四章 水飞蓟果托总黄酮的分离纯化及结构鉴定 | 第51-71页 |
| 4.1 材料与仪器 | 第52页 |
| 4.1.1 材料与试剂 | 第52页 |
| 4.1.2 仪器设备 | 第52页 |
| 4.2 试验方法 | 第52-57页 |
| 4.2.1 果托总黄酮粗提物样品的制备 | 第52-53页 |
| 4.2.2 指标测定与方法 | 第53页 |
| 4.2.3 大孔树脂法分离纯化水飞蓟果托总黄酮试验设计 | 第53-55页 |
| 4.2.4 硅胶柱层析分离果托总黄酮试验设计 | 第55-56页 |
| 4.2.5 果托总黄酮单体化合物红外光谱分析 | 第56页 |
| 4.2.6 果托总黄酮单体化合物核磁共振波谱分析 | 第56页 |
| 4.2.7 果托总黄酮单体化合物质谱分析 | 第56-57页 |
| 4.3 结果与分析 | 第57-69页 |
| 4.3.1 大孔树脂纯化水飞蓟果托总黄酮 | 第57-61页 |
| 4.3.2 果托总黄酮纯度和回收率的测定 | 第61-62页 |
| 4.3.3 硅胶柱层析分离果托总黄酮试验结果 | 第62-63页 |
| 4.3.4 果托总黄酮单体化合物的结构鉴定 | 第63-69页 |
| 4.4 讨论 | 第69-70页 |
| 4.5 结论 | 第70-71页 |
| 第五章 水飞蓟果托总黄酮的抗氧化活性研究 | 第71-83页 |
| 5.1 材料与仪器 | 第71-72页 |
| 5.1.1 试验材料 | 第71-72页 |
| 5.1.2 试验仪器 | 第72页 |
| 5.2 试验方法 | 第72-73页 |
| 5.2.1 体外抗氧化试验方法 | 第72页 |
| 5.2.2 体内抗氧化试验方法 | 第72-73页 |
| 5.2.3 数据分析 | 第73页 |
| 5.3 试验结果与分析 | 第73-80页 |
| 5.3.1 水飞蓟果托总黄酮的体外抗氧化活性 | 第73-77页 |
| 5.3.2 水飞蓟果托总黄酮的体内抗氧化活性 | 第77-80页 |
| 5.4 讨论 | 第80-81页 |
| 5.5 本章小结 | 第81-83页 |
| 第六章 水飞蓟果托总黄酮的降血糖活性研究 | 第83-93页 |
| 6.1 试验材料与仪器 | 第83-84页 |
| 6.1.1 试验材料 | 第83页 |
| 6.1.2 饲料配方 | 第83-84页 |
| 6.1.3 试验仪器 | 第84页 |
| 6.2 试验方法 | 第84-86页 |
| 6.2.1 2型糖尿病大鼠模型的建立 | 第84页 |
| 6.2.2 水飞蓟果托总黄酮水溶液的制备 | 第84页 |
| 6.2.3 分组与给药 | 第84-85页 |
| 6.2.4 血液与组织样本的制备 | 第85页 |
| 6.2.5 检测指标与方法 | 第85页 |
| 6.2.6 糖耐量试验 | 第85-86页 |
| 6.2.7 数据处理 | 第86页 |
| 6.3 试验结果与分析 | 第86-91页 |
| 6.3.1 试验大鼠的一般情况观察 | 第86页 |
| 6.3.2 水飞蓟果托总黄酮对试验糖尿病大鼠血糖的影响 | 第86-87页 |
| 6.3.3 水飞蓟果托总黄酮对试验糖尿病大鼠血脂的影响 | 第87-88页 |
| 6.3.4 水飞蓟果托总黄酮对试验糖尿病大鼠血清SOD活性和MDA含量的影响 | 第88-89页 |
| 6.3.5 水飞蓟果托总黄酮对试验糖尿病大鼠糖耐量的影响 | 第89-90页 |
| 6.3.6 试验大鼠的肝脏切片观察 | 第90-91页 |
| 6.4 讨论 | 第91-92页 |
| 6.5 本章小结 | 第92-93页 |
| 第七章 结论、创新点及展望 | 第93-96页 |
| 7.1 结论 | 第93-94页 |
| 7.2 创新点 | 第94页 |
| 7.3 展望 | 第94-96页 |
| 参考文献 | 第96-106页 |
| 附录 | 第106-112页 |
| 致谢 | 第112-113页 |
| 攻读博士期间发表的学术论文 | 第113页 |
