摘要 | 第5-9页 |
abstract | 第9-13页 |
缩略词 | 第16-17页 |
前言 | 第17-19页 |
第一部分 促炎因子刺激对胶质瘤细胞中线粒体形态学的影响 | 第19-33页 |
1 材料和方法 | 第19-26页 |
1.1 实验仪器和材料 | 第19-22页 |
1.2 主要溶液配制 | 第22-24页 |
1.3 细胞与组织来源 | 第24页 |
1.4 实验方法 | 第24-26页 |
2 结果 | 第26-32页 |
2.1 炎症在各级胶质瘤组织中的表达情况 | 第26-28页 |
2.2 LPS&IFN-γ联合刺激下线粒体形态学变化 | 第28-30页 |
2.3 LPS&IFN-γ 联合刺激下环状线粒体的比例 | 第30页 |
2.4 LPS和IFN-γ 联合刺激下Drp1和Mfn2的变化 | 第30-31页 |
2.5 LPS和IFN-γ 联合刺激下线粒体形态变化 | 第31-32页 |
3 讨论 | 第32-33页 |
第二部分 促炎因子刺激对胶质瘤细胞中线粒体生物学性能的影响 | 第33-43页 |
1 材料和方法 | 第33-37页 |
1.1 实验仪器和材料 | 第33-34页 |
1.2 主要溶液配制 | 第34-36页 |
1.3 实验方法 | 第36-37页 |
2 结果 | 第37-42页 |
2.1 LPS和IFN-γ 联合刺激后ROS的变化 | 第37-38页 |
2.2 促炎因子刺激后U87-MG细胞脂质过氧化变化 | 第38-39页 |
2.3 促炎因子LPS和IFN-γ 联合刺激下线粒体膜电位变化 | 第39-41页 |
2.4 加入活性氧抑制剂NAC后线粒体形态学变化 | 第41-42页 |
3 讨论 | 第42-43页 |
第三部分 促炎因子刺激胶质瘤中线粒体的质量控制 | 第43-51页 |
1 材料和方法 | 第43-45页 |
1.1 实验仪器和材料 | 第43-44页 |
1.2 主要溶液配制 | 第44页 |
1.3 实验方法 | 第44-45页 |
2 结果 | 第45-49页 |
2.1 检测促炎因子LPS和IFN-γ 联合刺激后U87-MG细胞中自噬的变化 | 第45-46页 |
2.2 通过质粒转染检测自噬水平的变化 | 第46-47页 |
2.3 观察LC3B与线粒体共定位的结果 | 第47-49页 |
2.4 观察溶酶体与线粒体共定位的结果 | 第49页 |
3 讨论 | 第49-51页 |
结论 | 第51-52页 |
参考文献 | 第52-56页 |
综述 | 第56-72页 |
参考文献 | 第64-72页 |
致谢 | 第72-73页 |
个人简历 | 第73页 |