摘要 | 第4-5页 |
Abstract | 第5-6页 |
英文缩写词 | 第7-11页 |
第1章 绪论 | 第11-23页 |
1.1 癌症研究概况 | 第11-13页 |
1.2 肿瘤糖酵解 | 第13-14页 |
1.3 糖酵解通路中的关键酶与肿瘤 | 第14-16页 |
1.3.1 己糖激酶 2(HK2) | 第14页 |
1.3.2 丙酮酸激酶(PK) | 第14-15页 |
1.3.3 果糖磷酸激酶 2(PFK2/PFKFB3) | 第15-16页 |
1.3.4 葡萄糖转运蛋白(GLUT) | 第16页 |
1.4 糖酵解通路中的信号途径与肿瘤 | 第16-18页 |
1.4.1 PI3K-AKT信号通路 | 第16-17页 |
1.4.2 mTOR信号通路与肿瘤糖代谢 | 第17页 |
1.4.3 AMPK信号通路与肿瘤糖代谢 | 第17-18页 |
1.5 天然产物对肿瘤代谢的影响 | 第18-21页 |
1.5.1 姜黄素 | 第19-20页 |
1.5.2 丹参酮 | 第20-21页 |
1.6 miRNA调控糖酵解途径中的关键酶与肿瘤 | 第21-22页 |
1.7 研究内容与意义 | 第22-23页 |
第2章 姜黄素通过AMPK通路介导的代谢转变抑制Ec109细胞生长 | 第23-41页 |
2.1 引言 | 第23-24页 |
2.2 实验材料 | 第24-27页 |
2.2.1 药品 | 第24页 |
2.2.2 仪器设备 | 第24页 |
2.2.3 试剂及耗材 | 第24-26页 |
2.2.4 引物的设计合成 | 第26-27页 |
2.3 实验方法 | 第27-32页 |
2.3.1 细胞培养 | 第27页 |
2.3.2 MTS法细胞毒检测 | 第27-28页 |
2.3.3 细胞凋亡试验 | 第28页 |
2.3.4 RNA提取及RT-PCR实验 | 第28-30页 |
2.3.5 蛋白质提取及Western检测 | 第30-32页 |
2.3.6 转染 | 第32页 |
2.3.7 统计学处理 | 第32页 |
2.4 实验结果 | 第32-37页 |
2.4.1 姜黄素抑制Ec109细胞生长 | 第32-33页 |
2.4.2 姜黄素诱导Ec109细胞周期阻滞在G2/M期 | 第33-35页 |
2.4.3 姜黄素下调Ec109细胞中的糖酵解酶的表达 | 第35-36页 |
2.4.4 AMPK参与姜黄素介导的Ec109细胞中糖酵解酶的下调过程 | 第36页 |
2.4.5 AMPK介导的糖酵解酶下调阻遏Ec109细胞的生长 | 第36-37页 |
2.5 讨论 | 第37-39页 |
2.6 本章小结 | 第39-41页 |
第3章 糖代谢机制在丹参酮ⅡA抑制Ec109细胞增殖的作用研究 | 第41-59页 |
3.1 引言 | 第41页 |
3.2 实验材料 | 第41-42页 |
3.2.1 药品 | 第41-42页 |
3.3 实验方法 | 第42-45页 |
3.3.1 细胞培养 | 第42页 |
3.3.2 MTS法细胞毒检测 | 第42页 |
3.3.3 细胞周期分析 | 第42页 |
3.3.4 RNA提取及RT-PCR实验 | 第42-43页 |
3.3.5 蛋白质提取及Western检测 | 第43页 |
3.3.6 micro RNA转染 | 第43-44页 |
3.3.7 转染 | 第44-45页 |
3.3.8 统计学处理 | 第45页 |
3.4 实验结果 | 第45-55页 |
3.4.1 丹参酮ⅡA对肿瘤细胞增殖的抑制作用 | 第45-46页 |
3.4.2 丹参酮ⅡA对Ec109细胞细胞周期和细胞凋亡的影响 | 第46-48页 |
3.4.3 丹参酮ⅡA对糖酵解通路关键酶mRNA表达的影响 | 第48-49页 |
3.4.4 丹参酮ⅡA对糖酵解通路关键酶蛋白表达的影响 | 第49-51页 |
3.4.5 siRNA转染检测丹参酮ⅡA对肿瘤细胞糖酵解通路关键酶的抑制作用 | 第51-52页 |
3.4.6 丹参酮ⅡA通过miRNA下调PKM2的表达从而抑制Ec109细胞的增殖 | 第52-55页 |
3.5 讨论 | 第55-57页 |
3.6 本章小结 | 第57-59页 |
结论 | 第59-61页 |
参考文献 | 第61-71页 |
攻读硕士学位期间所发表的学术论文 | 第71-73页 |
致谢 | 第73页 |