| 摘要 | 第5-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 1. 绪论 | 第12-32页 |
| 1.1. 壳聚糖的性质与改性研究情况 | 第12-15页 |
| 1.1.1. 壳聚糖结构性质概述 | 第12-13页 |
| 1.1.2. 壳聚糖的医疗应用 | 第13-15页 |
| 1.2. N-琥珀酰壳聚糖及其纳米粒的研究概况 | 第15-24页 |
| 1.2.1. 壳聚糖改性研究概况 | 第15-17页 |
| 1.2.2. N-琥珀酰壳聚糖的研究及应用 | 第17-20页 |
| 1.2.3. N-琥珀酰壳聚糖合成工艺概况及表征 | 第20-22页 |
| 1.2.4. N-琥珀酰壳聚糖纳米粒制备研究 | 第22-24页 |
| 1.3. 靶向血管内皮生长因子的抗肿瘤研究 | 第24-31页 |
| 1.3.1. 靶向药物载体的研究及其应用 | 第24-26页 |
| 1.3.2. 血管内皮生长因子在肿瘤生长中的作用 | 第26-27页 |
| 1.3.3. 肿瘤的基因治疗研究概况 | 第27-29页 |
| 1.3.4. RNAi疗法及其在抗肿瘤治疗中的应用 | 第29-31页 |
| 1.4. 课题研究意义及展望 | 第31-32页 |
| 1.4.1. 课题研究意义 | 第31页 |
| 1.4.2. 展望 | 第31-32页 |
| 2. N-琥珀酰壳聚糖siRNA纳米粒的制备及性质检测 | 第32-43页 |
| 2.1. 实验材料及仪器 | 第32-34页 |
| 2.2. 实验方法 | 第34-35页 |
| 2.2.1. N-琥珀酰壳聚糖siRNA纳米粒的制备 | 第34页 |
| 2.2.2. N-琥珀酰壳聚糖siRNA纳米粒包封率测定 | 第34-35页 |
| 2.2.3. N-琥珀酰壳聚糖siRNA纳米粒电位及粒径测定 | 第35页 |
| 2.2.4. N-琥珀酰壳聚糖siRNA纳米粒的形态学观察 | 第35页 |
| 2.3. 结果与讨论 | 第35-42页 |
| 2.3.1. N-琥珀酰壳聚糖siRNA纳米粒包封率测定结果 | 第35-36页 |
| 2.3.2. N-琥珀酰壳聚糖siRNA纳米粒粒径分析 | 第36-38页 |
| 2.3.3. N-琥珀酰壳聚糖siRNA纳米粒稳定性分析 | 第38页 |
| 2.3.4. TEM观察N-琥珀酰壳聚糖siRNA纳米粒 | 第38-42页 |
| 2.4. 小结 | 第42-43页 |
| 3. N-琥珀酰壳聚糖siRNA纳米粒对不同肿瘤细胞的亲和性研究 | 第43-58页 |
| 3.1. 实验材料及仪器 | 第43-46页 |
| 3.2. 实验方法 | 第46-49页 |
| 3.2.1. FITC标记N-琥珀酰壳聚糖 | 第46页 |
| 3.2.2. 标记率测定 | 第46页 |
| 3.2.3. 细胞培养 | 第46-47页 |
| 3.2.4. N-琥珀酰壳聚糖肿瘤亲和性研究 | 第47-49页 |
| 3.3. 结果与讨论 | 第49-57页 |
| 3.3.1. FITC标记N-琥珀酰壳聚糖标记率结果测定 | 第49-50页 |
| 3.3.2. N-琥珀酰壳聚糖转染肿瘤细胞状况观测 | 第50-53页 |
| 3.3.3. 肿瘤细胞N-琥珀酰壳聚糖摄取率 | 第53-57页 |
| 3.4. 小结 | 第57-58页 |
| 4. N-琥珀酰壳聚糖siRNA纳米粒对H460细胞抑制效应研究 | 第58-72页 |
| 4.1. 实验材料及仪器 | 第58-59页 |
| 4.2. 实验方法 | 第59-64页 |
| 4.2.1. MTT法检测NSC-siRNA纳米粒抑制效果 | 第59-60页 |
| 4.2.2. AnnexinV-FITC/PI双染色法研究细胞凋亡 | 第60-61页 |
| 4.2.3. ELISA检测NSC-siRNA纳米粒对细胞VEGF表达情况影响 | 第61-62页 |
| 4.2.4. 荧光定量RT-PCR检测细胞VEGF基因表达情况影响 | 第62-64页 |
| 4.3. 结果与讨论 | 第64-71页 |
| 4.3.1. 增殖抑制率 | 第64-65页 |
| 4.3.2. 细胞凋亡 | 第65-68页 |
| 4.3.3. VEGF蛋白分泌抑制 | 第68-70页 |
| 4.3.4. VEGF基因表达变化情况 | 第70-71页 |
| 4.4. 小结 | 第71-72页 |
| 5. 总结 | 第72-74页 |
| 5.1. 结论 | 第72页 |
| 5.2. 创新点 | 第72-74页 |
| 致谢 | 第74-75页 |
| 参考文献 | 第75-82页 |
