| 摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 第一章 文献综述 | 第8-16页 |
| 1.1 研究背景与进展 | 第8-15页 |
| 1.1.1 硫化氢的研究 | 第8-9页 |
| 1.1.2 植物体内过氧化氢（ROS）的研究进展 | 第9-10页 |
| 1.1.3 植物体内NO的研究进展 | 第10-12页 |
| 1.1.4 植物体内MPK蛋白激酶的研究进展 | 第12-13页 |
| 1.1.5 植物体内生长素的研究进展 | 第13-15页 |
| 1.2 研究目的及意义 | 第15-16页 |
| 第二章 材料与方法 | 第16-21页 |
| 2.1 实验材料 | 第16页 |
| 2.2 实验方法 | 第16-21页 |
| 2.2.1 植物培养 | 第16-17页 |
| 2.2.2 培养条件 | 第17页 |
| 2.2.3 培养基配制 | 第17页 |
| 2.2.4 拟南芥幼苗的处理 | 第17页 |
| 2.2.5 荧光显微镜的使用 | 第17页 |
| 2.2.6 表型观察 | 第17页 |
| 2.2.7 q-RT-PCR分析 | 第17-18页 |
| 2.2.8 IAA浓度测量 | 第18页 |
| 2.2.9 植物总DNA的提取 | 第18页 |
| 2.2.10 植物总RNA的提取 | 第18页 |
| 2.2.11 反转录制备拟南芥cDNA | 第18-19页 |
| 2.2.12 PCR扩增 | 第19页 |
| 2.2.13 碘化丙啶（PI）染色 | 第19页 |
| 2.2.14 分子信号NO检测 | 第19-20页 |
| 2.2.15 荧光法检测活性氧 | 第20页 |
| 2.2.16 GUS染色 | 第20-21页 |
| 第三章 实验结果与分析 | 第21-36页 |
| 3.1 外源H_2S导致拟南芥幼苗主根变短 | 第21页 |
| 3.2 外源H_2S通过生长素信号通路抑制主根生长 | 第21-22页 |
| 3.3 外源H_2S处理下，H2O2和NO对拟南芥主根生长的抑制都是必需的 | 第22-27页 |
| 3.3.1 外源H_2S影响与根尖活性氧（ROS）的关系 | 第22-24页 |
| 3.3.1.1 ROS荧光探针(DCFH-DA)检测活性氧的变化 | 第22-23页 |
| 3.3.1.2 结合药理和遗传学实验检测ROS突变体对外源H_2S处理下主根抑制影响 | 第23-24页 |
| 3.3.2 外源H_2S影响与根尖NO的关系 | 第24-25页 |
| 3.3.2.1 利用NO荧光探针（DAF-FM DA）检测NO信号 | 第24-25页 |
| 3.3.3 ROS/NO在外源H_2S对拟南芥主根生长抑制的信号通路中上下游关系的分析 | 第25-27页 |
| 3.3.3.1 ROS清除剂对外源H_2S处理后NO的影响 | 第25页 |
| 3.3.3.2 NO抑制剂对NaHS处理后ROS的影响 | 第25页 |
| 3.3.3.3 结合药理和遗传学实验验证ROS和NO上下游关系 | 第25-27页 |
| 3.4 外源H_2S处理下，MPK6参与拟南芥幼苗主根生长抑制过程 | 第27-28页 |
| 3.4.1 外源H_2S处理下，MPK6参与拟南芥幼苗主根生长抑制 | 第27页 |
| 3.4.2 外源H_2S处理下，MPK6在ROS下游，促进NO产生 | 第27-28页 |
| 3.5 NO参与H_2S介导的主根生长素抑制，是通过调节生长素的分布和响应 | 第28-33页 |
| 3.5.1 生长素运输和分布受到强烈抑制 | 第28-31页 |
| 3.5.2 生长素响应受到抑制 | 第31-33页 |
| 3.5.3 生长素合成受到不太明显抑制 | 第33页 |
| 3.6 H_2S介导的主根生长抑制受分生组织影响 | 第33-36页 |
| 3.6.1 干细胞分裂活性减弱 | 第33-34页 |
| 3.6.2 分生区细胞分裂受到抑制 | 第34-36页 |
| 第五章 结论与讨论 | 第36-39页 |
| 参考文献 | 第39-47页 |
| 致谢 | 第47-49页 |
| 个人简介 | 第49页 |
