致谢 | 第5-8页 |
摘要 | 第8-11页 |
Abstract | 第11-13页 |
英文缩略词表 | 第14-19页 |
引言 | 第19-21页 |
实验材料与仪器 | 第21-25页 |
1 实验材料 | 第21-23页 |
1.1 细胞株 | 第21页 |
1.2 主要试剂 | 第21-23页 |
1.3 实验用质粒 | 第23页 |
2 实验仪器 | 第23-25页 |
实验方法 | 第25-31页 |
1 细胞培养 | 第25页 |
1.1 NB4细胞的培养 | 第25页 |
1.2 贴壁细胞293T细胞和HeLa细胞的培养 | 第25页 |
2 MMA~Ⅲ和DMA~Ⅲ的合成和使用 | 第25-26页 |
3 Annexin V/PI双染检测细胞凋亡率 | 第26页 |
4 Western blot法检测相关蛋白表达 | 第26-28页 |
4.1 蛋白提取 | 第26页 |
4.2 蛋白浓度测定 | 第26-27页 |
4.3 Western blot | 第27页 |
4.4 Western blot实验中部分试剂的配制 | 第27-28页 |
5 CHOP shRNA慢病毒侵染NB4细胞 | 第28-29页 |
6 质粒小抽 | 第29页 |
7 贴壁细胞的脂质体转染 | 第29-30页 |
8 数据统计 | 第30-31页 |
第一部分 DMA~Ⅲ诱导NB4细胞内质网应激致细胞凋亡的机制研究 | 第31-39页 |
1 实验结果 | 第31-36页 |
1.1 对比三种砷化合物(iAs~Ⅲ、MMA~Ⅲ、DMA~Ⅲ)诱导NB4细胞凋亡和内质网应激的差异作用 | 第31-32页 |
1.2 内质网应激PERK通路的激活及促凋亡蛋白CHOP的表达 | 第32-33页 |
1.3 CHOP shRNA慢病毒侵染NB4细胞对DMA~Ⅲ诱导内质网应激致凋亡的影响 | 第33-34页 |
1.4 内质网应激ASK1-JNK通路相关蛋白的表达变化 | 第34-35页 |
1.5 JNK抑制剂SP600125对DMA~Ⅲ诱导内质网应激致凋亡的影响 | 第35-36页 |
2 讨论 | 第36-38页 |
3 小结 | 第38-39页 |
第二部分 砷移除对PML及PML-RARα蛋白溶解性及修饰的影响 | 第39-49页 |
1 实验结果 | 第39-46页 |
1.1 对比三种砷化合物(iAs~Ⅲ、MMA~Ⅲ、DMA~Ⅲ)对PMLⅣ蛋白溶解性和修饰的不同作用 | 第39-40页 |
1.2 实验转染体系的确立 | 第40-41页 |
1.3 iAs~Ⅲ移除对PMLⅣ蛋白的溶解性和修饰的影响 | 第41页 |
1.4 iAs~Ⅲ移除对PMLⅤ蛋白的溶解性和修饰的影响 | 第41-42页 |
1.5 iAs~Ⅲ移除对PML-RARα融合蛋白的溶解性和修饰的影响 | 第42-45页 |
1.6 沉淀(P)修饰成分的检测 | 第45-46页 |
2 讨论 | 第46-48页 |
3 小结 | 第48-49页 |
总结 | 第49-50页 |
论文创新点 | 第50-51页 |
参考文献 | 第51-54页 |
综述 急性早幼粒细胞白血病報向治疗的研究进展 | 第54-77页 |
参考文献 | 第69-77页 |
作者简历及在读期间所取得的科研成果 | 第77-78页 |