| 摘要 | 第1-5页 |
| ABSTRACT | 第5-10页 |
| 1 前言 | 第10-22页 |
| ·真菌多糖的概述 | 第10页 |
| ·真菌多糖的提取 | 第10-11页 |
| ·真菌多糖的分离纯化 | 第11-13页 |
| ·除蛋白 | 第11页 |
| ·除色素 | 第11-12页 |
| ·去除小分子杂质 | 第12页 |
| ·多糖的纯化 | 第12-13页 |
| ·多糖分子量测定 | 第13页 |
| ·真菌多糖含量的测定 | 第13页 |
| ·真菌多糖的构效关系 | 第13-16页 |
| ·多糖的一级结构对其生物活性的影响 | 第13-15页 |
| ·真菌多糖的高级结构对生物活性的影响 | 第15-16页 |
| ·真菌多糖的生物活性 | 第16-18页 |
| ·多糖的抗肿瘤活性 | 第16-17页 |
| ·多糖的免疫调节活性 | 第17页 |
| ·多糖的降血脂、降血糖活性 | 第17-18页 |
| ·多糖的抗氧化活性 | 第18页 |
| ·多糖的其它生物活性 | 第18页 |
| ·多糖的综合利用 | 第18页 |
| ·白灵菇多糖的研究现状 | 第18-21页 |
| ·白灵菇的概述 | 第18-19页 |
| ·白灵菇多糖的功能 | 第19-20页 |
| ·白灵菇多糖的提取 | 第20页 |
| ·白灵菇多糖的发展趋势 | 第20-21页 |
| ·论文的研究目的、意义及研究内容 | 第21-22页 |
| ·论文的研究的目的、意义 | 第21页 |
| ·主要研究内容 | 第21-22页 |
| 2 材料与方法 | 第22-38页 |
| ·材料 | 第22-26页 |
| ·实验材料 | 第22页 |
| ·实验试剂 | 第22-23页 |
| ·仪器与设备 | 第23-25页 |
| ·主要试剂配制 | 第25-26页 |
| ·实验方法 | 第26-38页 |
| ·白灵菇碱提多糖的提取 | 第26页 |
| ·白灵菇碱提多糖的纯化 | 第26-27页 |
| ·碱提多糖理化性质的测定 | 第27-28页 |
| ·碱提多糖基本结构的测定 | 第28-30页 |
| ·HepG-2细胞的培养 | 第30页 |
| ·碱提多糖对HepG-2细胞的抑制作用研究 | 第30-34页 |
| ·碱提多糖抑制HepG-2细胞机理的初步探讨 | 第34-37页 |
| ·统计学方法 | 第37-38页 |
| 3 结果与讨论 | 第38-56页 |
| ·白灵菇碱提多糖的提取、纯化 | 第38-39页 |
| ·白灵菇粗多糖得率 | 第38页 |
| ·白灵菇多糖的洗脱曲线 | 第38页 |
| ·多糖含量的测定 | 第38-39页 |
| ·多糖中蛋白质含量测定 | 第39页 |
| ·碱提多糖的理化性质 | 第39-43页 |
| ·多糖的基本理化性质 | 第39-40页 |
| ·电镜观察多糖形态 | 第40-41页 |
| ·温度及剪切速率对多糖粘度的影响 | 第41页 |
| ·多糖熔点的测定 | 第41-42页 |
| ·X-射线衍射 | 第42-43页 |
| ·多糖PNA-2基本结构的测定 | 第43-46页 |
| ·多糖PNA-2分子量的测定 | 第43页 |
| ·多糖PNA-2的红外光谱分析 | 第43-44页 |
| ·多糖PNA-2的单糖组分分析 | 第44-46页 |
| ·多糖PNA-2对HepG-2细胞的抑制作用 | 第46-51页 |
| ·MTT法检测白灵菇碱提多糖对HepG-2细胞的影响 | 第46-47页 |
| ·细胞划痕实验检测多糖对HepG-2细胞迁移速率的影响 | 第47-48页 |
| ·电镜观察下细胞的形态变化 | 第48页 |
| ·AO/EB染色后细胞的凋亡情况 | 第48-49页 |
| ·彗星实验检测细胞的DNA损伤 | 第49-50页 |
| ·流式细胞术检测细胞周期 | 第50-51页 |
| ·碱提多糖对HepG-2细胞作用机制的初步探究 | 第51-56页 |
| ·碱提多糖对细胞线粒体膜电位的影响 | 第51-52页 |
| ·qRT-PCR检测caspase-3、caspase-9、Bcl-2、Cytochrome C mRNA的表达 | 第52-56页 |
| 4 结论 | 第56-57页 |
| 5 展望 | 第57-58页 |
| 6 参考文献 | 第58-67页 |
| 7 攻读硕士期间发表的论文情况 | 第67-68页 |
| 8 致谢 | 第68页 |
