摘要 | 第1-5页 |
ABSTRACT | 第5-10页 |
第一章 引言 | 第10-16页 |
1 NMDA受体调控吗啡成瘾及耐受机制的研究进展 | 第10-12页 |
·NMDA受体概述 | 第10-11页 |
·NMDA受体的药理作用 | 第11页 |
·NMDA受体调控吗啡成瘾及耐受机制 | 第11-12页 |
·NMDA受体-NO-c GMP通路调节 | 第11页 |
·NMDA受体-PKC-Mg2+通路调节 | 第11-12页 |
·NMDA受体-胞内蛋白通路调节 | 第12页 |
·NMDA受体-PKA-Ca MKII通路调节 | 第12页 |
2 NMDA受体抑制剂的研究进展 | 第12-15页 |
·竞争性拮抗剂 | 第12-13页 |
·非竞争性离子通道阻断剂 | 第13页 |
·Gly B结合位点抑制剂 | 第13页 |
·NR2B亚基特异性抑制剂 | 第13-15页 |
·小分子类NR2B亚基特异性抑制剂 | 第13-14页 |
·Connantokins类NR2B亚基特异性抑制剂 | 第14-15页 |
3 本课题的研究目的、内容及意义 | 第15-16页 |
第二章 Con-T[M8Q]抑制小鼠吗啡镇痛耐受的表达及发展 | 第16-25页 |
1 材料与方法 | 第16-19页 |
·实验材料 | 第16页 |
·药品与试剂 | 第16页 |
·实验动物 | 第16页 |
·实验材料与仪器 | 第16页 |
·实验方法 | 第16-19页 |
·吗啡耐受模型的建立 | 第16-17页 |
·镇痛实验方法 | 第17页 |
·Con-T[M8Q]对吗啡耐受表达的影响 | 第17页 |
·Con-T[M8Q]对吗啡耐受发展的影响 | 第17-18页 |
·Con-T[M8Q]的镇痛活性测定 | 第18-19页 |
·Con-T[M8Q]的成瘾性评价 | 第19页 |
·数据处理 | 第19页 |
2 结果与分析 | 第19-24页 |
·Con-T[M8Q]对吗啡耐受表达的影响 | 第19-20页 |
·Con-T[M8Q]对吗啡耐受发展的影响 | 第20-21页 |
·Con-T[M8Q]自身的镇痛作用 | 第21-23页 |
·Con-T[M8Q]的成瘾性评价 | 第23页 |
·讨论 | 第23-24页 |
3 本章小结 | 第24-25页 |
第三章 Con-T[M8Q]对NMDA受体NR2B亚基作用位点的初步研究 | 第25-40页 |
1 材料与方法 | 第25-35页 |
·实验材料 | 第25-27页 |
·主要试剂 | 第25-26页 |
·实验设备和仪器 | 第26-27页 |
·菌株、质粒和细胞 | 第27页 |
·实验方法 | 第27-35页 |
·NR1A质粒、NR2A质粒和NR2B质粒的提取 | 第27-28页 |
·琼脂糖凝胶电泳检测 | 第28-29页 |
·NMDA受体在HEK293细胞的表达 | 第29-30页 |
·Western-blot检测 | 第30-33页 |
·电生理实验 | 第33-35页 |
2 结果与分析 | 第35-39页 |
·NR1A质粒、NR2A质粒和NR2B质粒的提取 | 第35页 |
·琼脂糖凝胶电泳检测 | 第35-36页 |
·NMDA受体在HEK293细胞的表达 | 第36页 |
·Western-blot | 第36-37页 |
·电生理实验 | 第37-38页 |
·讨论 | 第38-39页 |
3 本章小结 | 第39-40页 |
第四章 新型芋螺多肽的合成 | 第40-48页 |
1 材料与方法 | 第40-43页 |
·实验材料 | 第40-41页 |
·主要试剂 | 第40-41页 |
·实验设备与仪器 | 第41页 |
·实验方法 | 第41-43页 |
·多肽合成 | 第41-42页 |
·肽树脂的裂解 | 第42页 |
·多肽的折叠 | 第42页 |
·富集折叠后的多肽 | 第42-43页 |
·折叠产物的纯化 | 第43页 |
2 结果与分析 | 第43-47页 |
·Bt 3.1 的合成 | 第43-45页 |
·Im IIA的合成 | 第45-46页 |
·讨论 | 第46-47页 |
3 本章小结 | 第47-48页 |
第五章 总结 | 第48-50页 |
1 工作总结 | 第48页 |
2 创新点 | 第48-49页 |
3 展望 | 第49页 |
4 存在的不足 | 第49-50页 |
参考文献 | 第50-54页 |
附录 | 第54-55页 |
致谢 | 第55-56页 |
攻读硕士学位期间发表的主要论文 | 第56页 |