目录 | 第1-11页 |
中文摘要 | 第11-13页 |
Abstract | 第13-16页 |
前言 | 第16-19页 |
参考文献 | 第17-19页 |
第一部分 大鼠脊髓损伤动物模型的建立及脊髓组织病理的观察 | 第19-33页 |
1 实验材料 | 第19-20页 |
·实验动物 | 第19页 |
·主要手术器械及耗材 | 第19页 |
·主要仪器 | 第19页 |
·主要药物与试剂 | 第19页 |
·主要试剂的配制 | 第19-20页 |
2 实验方法 | 第20-24页 |
·建立大鼠脊髓损伤动物模型 | 第20-21页 |
·动物饲养及护理 | 第21-22页 |
·观测指标 | 第22-24页 |
·神经功能评价 | 第22-23页 |
(1) 大鼠后肢运动BBB评分 | 第22页 |
(2) 斜板试验 | 第22-23页 |
·组织形态学观察 | 第23-24页 |
(1) 标本采集及制备 | 第23页 |
(2) 组织切片HE染色 | 第23-24页 |
·统计分析 | 第24页 |
3 结果 | 第24-27页 |
·一般情况 | 第24页 |
·动物大体观察 | 第24-25页 |
·行为学评分 | 第25-26页 |
·组织形态学观察 | 第26-27页 |
4 分析与讨论 | 第27-30页 |
·实验动物种类的选择 | 第27页 |
·SCI动物模型的制备标准及建立 | 第27-28页 |
·脊髓损伤平面的选择及定位 | 第28页 |
·SCI动物模型的评价 | 第28-30页 |
5 小结 | 第30页 |
参考文献 | 第30-33页 |
第二部分 脊髓康对脊髓损伤大鼠运动功能恢复及脊髓组织结构的影响 | 第33-51页 |
1 实验材料 | 第33页 |
2 实验方法 | 第33-36页 |
·制备实验药物 | 第33-34页 |
(1) 中药“脊髓康”药液 | 第33-34页 |
(2) 0.3 %醋酸泼尼松片/强的松片药液 | 第34页 |
·建立大鼠急性脊髓损伤动物模型 | 第34页 |
·动物分组及王预措施 | 第34页 |
·观测指标 | 第34-36页 |
·一般情况观察 | 第34页 |
·神经功能评价 | 第34-35页 |
(1) 大鼠后肢运动BBB评分 | 第34页 |
(2) 斜板试验 | 第34-35页 |
·脊髓组织结构的观察 | 第35-36页 |
(1) 标本采集及制备 | 第35页 |
(2) 脊髓组织HE染色 | 第35页 |
(3) 透射电镜检查 | 第35-36页 |
·统计分析 | 第36页 |
3 结果 | 第36-44页 |
·各组大鼠术后一般情况 | 第36-37页 |
·行为学评分 | 第37-39页 |
·BBB运动功能评分 | 第37-38页 |
·斜板试验结果 | 第38-39页 |
·脊髓组织形态学变化 | 第39-44页 |
·脊髓组织HE染色观察 | 第39-41页 |
·脊髓组织的超微结构变化 | 第41-44页 |
4 分析与讨论 | 第44-48页 |
·脊髓损伤的发病机制 | 第44页 |
·脊髓损伤的修复机制 | 第44页 |
·脊髓损伤的治疗现状 | 第44-45页 |
·西医药治疗 | 第44-45页 |
·中医药治疗 | 第45页 |
·中医对脊髓损伤的认识 | 第45-46页 |
·病因病机 | 第45-46页 |
·治疗原则 | 第46页 |
·脊髓康的组方原则及处方分析 | 第46-47页 |
·中医药促进神经再生的作用机制 | 第47-48页 |
·单味中药及其有效成分 | 第47页 |
·中药复方 | 第47页 |
·问题与展望 | 第47-48页 |
5 小结 | 第48页 |
参考文献 | 第48-51页 |
第三部分 脊髓康对大鼠脊髓损伤后轴突再生微环境的影响 | 第51-79页 |
实验一 脊髓康对脊髓损伤大鼠血清BDNF、NGF表达的影响 | 第51-55页 |
1 实验材料 | 第51页 |
·实验动物 | 第51页 |
·主要手术器械及耗材 | 第51页 |
·主要仪器 | 第51页 |
·主要药物与试剂 | 第51页 |
·主要试剂的配制 | 第51页 |
2 实验方法 | 第51-52页 |
·制备实验药物 | 第51页 |
·建立大鼠急性脊髓损伤动物模型 | 第51页 |
·动物分组及干预措施 | 第51-52页 |
·观测指标 | 第52页 |
·统计分析 | 第52页 |
3 结果 | 第52-54页 |
·各组大鼠SCI血清BDNF的表达情况 | 第52-53页 |
·各组大鼠SCI后血清NGF的表达情况 | 第53-54页 |
4 小结 | 第54-55页 |
实验二 脊髓康对大鼠脊髓损伤区BDNF、NGF及NGR蛋白表达的影响 | 第55-67页 |
1 实验材料 | 第55-57页 |
·实验动物 | 第55页 |
·主要手术器械及耗材 | 第55页 |
·主要仪器 | 第55页 |
·主要试剂 | 第55-56页 |
·主要试剂的配制 | 第56-57页 |
2 实验方法 | 第57-59页 |
·制备实验药物 | 第57页 |
·建立大鼠急性脊髓损伤动物模型 | 第57页 |
·动物分组及干预措施 | 第57页 |
·标本制备 | 第57页 |
·指标检测 | 第57-59页 |
·免疫组织化学法 | 第57-58页 |
·Western Blot法 | 第58-59页 |
3 结果 | 第59-66页 |
·各组大鼠脊髓损伤区BDNF蛋白的表达情况 | 第59-62页 |
·免疫组化结果 | 第59-61页 |
·Western Blot结果 | 第61-62页 |
·各组大鼠脊髓损伤区NGF蛋白的表达情况 | 第62-64页 |
·各组大鼠脊髓损伤区NgR蛋白的表达情况 | 第64-66页 |
·免疫组化结果 | 第64-66页 |
·Western Blot结果 | 第66页 |
4 小结 | 第66-67页 |
实验三 脊髓康对大鼠脊髓损伤区BDNF、NGF及NGR MRNA表达的影响 | 第67-77页 |
1 实验材料 | 第67页 |
·实验动物 | 第67页 |
·主要耗材 | 第67页 |
·主要仪器 | 第67页 |
·主要试剂 | 第67页 |
2 实验方法 | 第67-70页 |
·制备实验药物 | 第67-68页 |
·建立大鼠急性脊髓损伤动物模型 | 第68页 |
·动物分组及干预措施 | 第68页 |
·标本采集 | 第68页 |
·荧光定量PCR法检测大鼠脊髓损伤区BDNF、NGF及NgR mRNA的表达 | 第68-70页 |
·引物设计 | 第68页 |
·脊髓组织总RNA的提取 | 第68-69页 |
·总RNA浓度及纯度的测定 | 第69页 |
·脊髓组织总RNA逆转录成cDNA | 第69页 |
·荧光定量PCR检测BDNF、NGF及NgR mRNA的表达 | 第69-70页 |
·荧光定量PCR结果分析 | 第70页 |
3 结果 | 第70-74页 |
·RNA纯度及完整性分析 | 第70页 |
·荧光定量PCR扩增曲线及熔解曲线线分析 | 第70-71页 |
·各组大鼠脊髓损伤区BDNF mRNA的表达情况 | 第71-72页 |
·各组大鼠脊髓损伤区NGF mRNA的表达情况 | 第72-73页 |
·各组大鼠脊髓损伤区NgR mRNA的表达情况 | 第73-74页 |
4 小结 | 第74页 |
5 分析与讨论 | 第74-77页 |
·轴突再生微环境与神经再生 | 第74-75页 |
·BDNF在脊髓组织中的表达及作用 | 第75-76页 |
·NGF在脊髓组织中的表达及作用 | 第76页 |
·NgR在脊髓组织中的表达及作用 | 第76-77页 |
参考文献 | 第77-79页 |
第四部分 全文总结与展望 | 第79-81页 |
主要研究成果 | 第79页 |
有待继续探讨的问题 | 第79-81页 |
综述 | 第81-85页 |
参考文献 | 第83-85页 |
攻读博士学位期间取得的学术成果 | 第85-86页 |
中英文缩略词表 | 第86-87页 |
致谢 | 第87-88页 |
作者简介 | 第88页 |