| 英文缩略词对照 | 第1-9页 |
| 中文摘要 | 第9-15页 |
| Abstract | 第15-24页 |
| 前言 | 第24-26页 |
| 1 材料与方法 | 第26-39页 |
| ·材料 | 第26-29页 |
| ·实验动物 | 第26页 |
| ·细胞株 | 第26页 |
| ·主要试剂 | 第26-28页 |
| ·主要试剂的配置 | 第28-29页 |
| ·主要实验仪器 | 第29页 |
| ·实验方法 | 第29-39页 |
| ·大鼠肝癌模型的制备 | 第29-30页 |
| ·肝组织病理形态学观察 | 第30页 |
| ·ELISA 法检测大鼠肝组织中 TGF-β水平 | 第30-31页 |
| ·流式细胞术检测树突状细胞（DC）表型和调节性 T 细胞（Treg）比例 | 第31-32页 |
| ·大鼠外周血中 DC 表面共刺激分子检测 | 第31页 |
| ·大鼠外周血中 CD4~+CD25~+Foxp3~+Treg 检测 | 第31-32页 |
| ·小鼠骨髓来源 DC 的培养及 TGF-β处理 | 第32页 |
| ·流式细胞术检测 DC 表面分子 | 第32-33页 |
| ·Western blot 法检测 DC 中 IDO、PD-L1、STAT3 和 p-STAT3 表达 | 第33-35页 |
| ·蛋白质提取 | 第33页 |
| ·蛋白质定量（Lowry 法） | 第33-34页 |
| ·Western blot 操作步骤 | 第34-35页 |
| ·DC 抗原摄取能力分析 | 第35页 |
| ·混合淋巴细胞反应（MLR） | 第35-36页 |
| ·DC 培养上清中 IL-10 和 IL-12 水平检测 | 第36页 |
| ·小鼠骨髓来源 DC 的培养及 TGF-β时间和浓度相关处理 | 第36页 |
| ·小鼠肝癌细胞株（Hepa）的培养 | 第36-37页 |
| ·流式细胞术检测小鼠 CD4~+CD25~+Foxp3~+Treg 比例 | 第37-38页 |
| ·流式细胞术检测 T 细胞凋亡 | 第38页 |
| ·细胞毒性试验 | 第38-39页 |
| ·统计学处理 | 第39页 |
| 2 结果 | 第39-59页 |
| ·二乙基亚硝胺（DEN）诱导大鼠肝脏病变 | 第39-40页 |
| ·大鼠肝脏癌变过程中 TGF-β水平的变化 | 第40-41页 |
| ·大鼠肝脏癌变过程中 DC 表型的变化 | 第41-43页 |
| ·大鼠肝脏癌变过程中 DC 表面 CD80 的表达 | 第41-42页 |
| ·大鼠肝脏癌变过程中 DC 表面 CD86 的表达 | 第42页 |
| ·大鼠肝脏癌变过程中 DC 表面 MHCⅡ的表达 | 第42-43页 |
| ·大鼠肝脏癌变过程中 CD4~+CD25~+Foxp3~+Treg 比例的变化 | 第43-45页 |
| ·小鼠骨髓来源 DC 的鉴定 | 第45-46页 |
| ·形态学观察 | 第45页 |
| ·表型检测 | 第45-46页 |
| ·TGF-β对 DC 表面 CD40、CD83、CD86 和 MHCⅡ表达的影响 | 第46-47页 |
| ·TGF-β对 DC 中 CD45RB 和 IDO 表达的影响 | 第47-48页 |
| ·TGF-β对 DC 分泌 IL-10 和 IL-12 的影响 | 第48-49页 |
| ·TGF-β对 DC 抗原摄取能力的影响 | 第49-50页 |
| ·TGF-β对 DC 促进 T 细胞增殖功能的影响 | 第50页 |
| ·TGF-β上调 DC 表面 PD-L1 表达 | 第50-52页 |
| ·TGF-β上调 DC 中 STAT3 和 p-STAT3 表达 | 第52-54页 |
| ·STAT3 特异性阻断剂 NSC74859 作用后，DC 表面 PD-L1 表达的变化 | 第54-55页 |
| ·TGF-β-DC 诱导 T 细胞凋亡 | 第55-56页 |
| ·TGF-β-DC 诱导 CD4~+CD25~+Foxp3~+Treg 生成 | 第56-58页 |
| ·TGF-β-DC 抑制 T 细胞对 Hepa 的杀伤作用 | 第58-59页 |
| 3 讨论 | 第59-62页 |
| 4 结论 | 第62-63页 |
| 5 本研究的创新点 | 第63-64页 |
| 参考文献 | 第64-68页 |
| 附录 | 第68-71页 |
| 致谢 | 第71-73页 |
| 综述 | 第73-84页 |
| 参考文献 | 第81-84页 |
