摘要 | 第1-5页 |
ABSTRACT | 第5-10页 |
1 绪论 | 第10-20页 |
·研究背景及国内外研究现状 | 第10-19页 |
·梯度生物材料 | 第13-16页 |
·种子细胞 | 第16-19页 |
·本文研究的目的和内容 | 第19-20页 |
2 鼠尾胶原的提取、纯化和鉴定 | 第20-29页 |
·引言 | 第20页 |
·材料与方法 | 第20-24页 |
·实验动物 | 第20页 |
·主要实验设备 | 第20-21页 |
·主要药品和试剂 | 第21-22页 |
·主要试剂的配置 | 第22-23页 |
·实验方法 | 第23-24页 |
·结果 | 第24-27页 |
·鼠尾胶原Ⅰ的提取 | 第24-25页 |
·鼠尾胶原Ⅰ的纯化 | 第25-26页 |
·鼠尾胶原Ⅰ的鉴定 | 第26-27页 |
·鼠尾胶原Ⅰ的形态检测 | 第27页 |
·讨论 | 第27-29页 |
3 鼠尾胶原Ⅰ凝胶支架中形成梯度磷酸钙混合物 | 第29-37页 |
·引言 | 第29页 |
·材料与方法 | 第29-31页 |
·主要实验设备 | 第29页 |
·主要药品和试剂 | 第29页 |
·主要试剂的配置 | 第29-30页 |
·实验方法 | 第30-31页 |
·结果 | 第31-36页 |
·5mg/mL 鼠尾胶原Ⅰ凝胶支架的制备的结果 | 第31-32页 |
·形成了梯度磷酸钙混合物的鼠尾胶原Ⅰ与对照纯的鼠尾胶原Ⅰ形态上的比较结果 | 第32-33页 |
·磷酸钙混合物鼠尾胶原Ⅰ上层与下层扫描电镜的结果 | 第33页 |
·磷酸钙混合物鼠尾胶原Ⅰ石蜡切片的扫描电镜 | 第33-34页 |
·红外光谱(FTIR)检测 | 第34-35页 |
·XRD 射线检测 | 第35-36页 |
·讨论 | 第36-37页 |
4 SD 大鼠与梯度磷酸盐的鼠尾胶原材料的生物相容性研究 | 第37-43页 |
·引言 | 第37页 |
·材料与方法 | 第37-39页 |
·实验动物 | 第37页 |
·主要实验设备 | 第37页 |
·主要药品和试剂 | 第37页 |
·主要试剂的配制 | 第37-38页 |
·实验方法 | 第38-39页 |
·结果 | 第39-41页 |
·HE 染色梯度材料中的鼠尾胶原 | 第39页 |
·DAPI 染色梯度材料内迁移的细胞的细胞核 | 第39-41页 |
·讨论 | 第41-43页 |
5 SD 大鼠肌腱干细胞(TSPCS)的分离、培养及鉴定 | 第43-53页 |
·引言 | 第43-44页 |
·材料与方法 | 第44-48页 |
·实验动物 | 第44页 |
·主要实验设备 | 第44页 |
·主要药品和试剂 | 第44页 |
·主要试剂的配制 | 第44-45页 |
·实验方法 | 第45-48页 |
·结果 | 第48-51页 |
·TSPCs 的五种克隆团形态 | 第48-49页 |
·TSPCs 的成骨、成脂、成软骨的诱导分化鉴定 | 第49-50页 |
·TSPCs 的表面标记物鉴定 | 第50-51页 |
·讨论 | 第51-53页 |
6 TSPCS 种植于含有梯度磷酸钙混合物的鼠尾胶原Ⅰ支架中 | 第53-57页 |
·引言 | 第53页 |
·材料与方法 | 第53-55页 |
·实验动物 | 第53页 |
·主要实验设备 | 第53页 |
·主要药品和试剂 | 第53页 |
·主要试剂的配制 | 第53-54页 |
·实验方法 | 第54-55页 |
·结果 | 第55页 |
·肌腱干细胞(TSPCs)的 DAPI 染色 | 第55页 |
·讨论 | 第55-57页 |
7 结论 | 第57-59页 |
·全文总结 | 第57-58页 |
·鼠尾胶原Ⅰ的提取、纯化和鉴定 | 第57页 |
·磷酸盐鼠尾胶原梯度材料的制备 | 第57页 |
·磷酸盐鼠尾胶原梯度材料与大鼠生物相容性分析 | 第57页 |
·肌腱干细胞(TSPCs)的分离、培养、鉴定 | 第57页 |
·磷酸盐鼠尾胶原梯度材料肌腱干细胞相容性分析 | 第57-58页 |
·展望 | 第58-59页 |
致谢 | 第59-60页 |
参考文献 | 第60-67页 |
附录 | 第67页 |
作者在攻读学位期间发表的论文目录 | 第67页 |