| 摘要 | 第1-9页 |
| Abstract | 第9-11页 |
| 前言 | 第11-12页 |
| 1 材料与方法 | 第12-27页 |
| ·材料 | 第12-13页 |
| ·实验动物 | 第12页 |
| ·研究内容 | 第12-13页 |
| ·试剂与仪器 | 第13-15页 |
| ·主要实验材料和试剂 | 第13-14页 |
| ·主要实验仪器和设备 | 第14-15页 |
| ·实验用液体的配制 | 第15-18页 |
| ·0.01mol/L磷酸盐缓冲液(PBS)的配制 | 第15页 |
| ·4%多聚甲醛溶液的配制 | 第15页 |
| ·D-Hank's液的配制 | 第15页 |
| ·不完全培养基的配制 | 第15-16页 |
| ·0.25%胰蛋白酶溶液的配制 | 第16页 |
| ·1万单位/ml青、链霉素溶液的配制 | 第16页 |
| ·完全培养基的配制 | 第16页 |
| ·1mol/LNaOH溶液的配制 | 第16页 |
| ·1mol/LHCL溶液的配制 | 第16页 |
| ·30%Triton X-100的配制 | 第16页 |
| ·无糖DMEM培养基的配制 | 第16-17页 |
| ·清洁用次强酸液的配制及应用注意事项 | 第17页 |
| ·XTT溶液的配制 | 第17页 |
| ·100μmol/L腺苷的DMEM液的配制 | 第17-18页 |
| ·实验用具的准备 | 第18-19页 |
| ·配制培养基所用物品的准备 | 第18页 |
| ·细胞取材、消化、分离、培养所用物品的准备 | 第18页 |
| ·盖玻片、普通载玻片的处理 | 第18-19页 |
| ·实验方法 | 第19-26页 |
| ·检测手段及对象 | 第19页 |
| ·阳性标准 | 第19页 |
| ·SD大鼠星形胶质细胞的分离、消化、传代 | 第19-20页 |
| ·SD大鼠神经元的分离、培养、纯化 | 第20-21页 |
| ·细胞生长情况 | 第21页 |
| ·星形胶质细胞及神经元的鉴定 | 第21-23页 |
| ·星形胶质细胞氧糖剥夺模型的建立 | 第23页 |
| ·ACM及ACMa的收集 | 第23-24页 |
| ·实验分组 | 第24-25页 |
| ·脑缺血再灌注模型的建立 | 第25页 |
| ·倒置显微镜下观察神经元的形态学变化 | 第25页 |
| ·XTT比色法检测细胞活性 | 第25-26页 |
| ·免疫荧光和免疫化学分别测定NSE、Bcl-2强阳性细胞的表达量 | 第26页 |
| ·统计学分析 | 第26-27页 |
| 2 结果 | 第27-29页 |
| ·倒置相差显微镜下观察细胞形态 | 第27页 |
| ·细胞正常形态 | 第27页 |
| ·脑缺血再灌注模型后各组神经元形态 | 第27页 |
| ·缺氧/复氧后神经元活性变化 | 第27-28页 |
| ·NSE、Bcl-2强阳性细胞的表达量 | 第28-29页 |
| 3 讨论 | 第29-32页 |
| ·神经元的培养 | 第29-30页 |
| ·星形胶质细胞条件培养液 | 第30页 |
| ·腺苷的保护机制 | 第30-32页 |
| 4 结论 | 第32-33页 |
| 附图 | 第33-40页 |
| 参考文献 | 第40-43页 |
| 综述：题目 | 第43-54页 |
| 参考文献 | 第48-54页 |
| 附录 | 第54-55页 |
| 攻读学位期间发表文章情况 | 第55-56页 |
| 致谢 | 第56-57页 |
| 个人简介 | 第57页 |