论文Ⅰ TIPE2负性调控VSMCs功能抗动脉粥样硬化的机制 | 第1-92页 |
中文摘要 | 第8-15页 |
ABSTRACT | 第15-23页 |
符号说明 | 第23-25页 |
前言 | 第25-28页 |
技术路线 | 第28-29页 |
材料与方法 | 第29-47页 |
1. 实验材料 | 第29-32页 |
2. 实验方法 | 第32-47页 |
·颈动脉套管术建立动脉粥样硬化动物模型 | 第32-35页 |
·小鼠原代血管平滑肌细胞的体外培养与鉴定 | 第35-41页 |
·ox-LDL对血管平滑肌细胞TIPE2表达的影响 | 第41-42页 |
·TIPE2调控VSMC功能研究 | 第42-46页 |
·分子机制的初步研究 | 第46页 |
·统计学分析 | 第46-47页 |
结果 | 第47-56页 |
1. TIPE2基因缺失促进小鼠体内斑块形成 | 第47-48页 |
2. TIPE2负调控体外培养的VSMCs功能 | 第48-53页 |
3. TIPE2通过RAC-1负性调节ERK1/2、P38信号通路活化 | 第53-56页 |
讨论 | 第56-64页 |
一 血管平滑肌细胞与动脉粥样硬化 | 第56-58页 |
二 TIPE2与VSMCs功能调控 | 第58-61页 |
三 TIPE2与动脉粥样硬化 | 第61-64页 |
结论 | 第64-65页 |
附图 | 第65-82页 |
附表 | 第82-84页 |
参考文献 | 第84-92页 |
论文Ⅱ TIPE1蛋白在小鼠组织及TIPE1、TIPE2 mRNA在细胞系的表达谱检测 | 第92-131页 |
中文摘要 | 第92-97页 |
ABSTRACT | 第97-104页 |
符号说明 | 第104-106页 |
前言 | 第106-108页 |
材料与方法 | 第108-111页 |
1. 实验材料 | 第108页 |
2. 实验方法 | 第108-111页 |
·TIPE1抗体特异性验证 | 第108页 |
·小鼠组织标本制备 | 第108-109页 |
·免疫组化检测TIPE1蛋白的组织特异性表达谱 | 第109页 |
·RT-PCR和real-time PCR检测人和小鼠细胞系TIPE1、TIPE2表达情况 | 第109-111页 |
结果 | 第111-115页 |
1. TIPE1抗体特异性验证 | 第111页 |
2. TIPE1在小鼠组织中的表达 | 第111-113页 |
3. TIPE1在细胞系的表达 | 第113页 |
4. TIPE2在细胞系的表达情况 | 第113-115页 |
讨论 | 第115-119页 |
一 TIPE1的表达及其功能 | 第115-116页 |
二 TIPE2的表达及其功能 | 第116-119页 |
结论 | 第119-120页 |
附图 | 第120-126页 |
附表 | 第126-129页 |
参考文献 | 第129-131页 |
致谢 | 第131-132页 |
攻读学位期间主要科研成果 | 第132-133页 |
学位论文评阅及答辩情况表 | 第133页 |