| 中文摘要 | 第1-7页 |
| ABSTRACT | 第7-9页 |
| 目录 | 第9-12页 |
| 第一章 绪论 | 第12-25页 |
| ·辐射诱导细胞凋亡机制的研究 | 第12-13页 |
| ·辐射诱导细胞凋亡信号转导通路研究现状 | 第13-15页 |
| ·p53转录依赖诱导的凋亡信号转导通路 | 第13-14页 |
| ·p53非转录依赖的凋亡信号转导通路 | 第14-15页 |
| ·激光共聚焦显微镜的原理及应用 | 第15-20页 |
| ·激光共焦扫描显微镜的原理及特性 | 第15-18页 |
| ·激光共焦扫描显微镜系统在生物、医学中的应用 | 第18-20页 |
| ·FRET基本原理及其应用 | 第20-24页 |
| ·FRET基本原理 | 第20-22页 |
| ·FRET应用 | 第22-24页 |
| ·本研究的目的和意义 | 第24-25页 |
| 第二章 利用荧光共振能量转移技术分析UV诱导的细胞凋亡过程中Bid的激活 | 第25-39页 |
| ·引言 | 第25-26页 |
| ·实验仪器 | 第26页 |
| ·实验材料与方法 | 第26-28页 |
| ·实验试剂 | 第26页 |
| ·细胞培养和质粒转染 | 第26-27页 |
| ·稳定表达细胞系的筛选 | 第27页 |
| ·荧光探针Rhodaminel23的标记方法 | 第27页 |
| ·UV照射处理和激光共聚焦扫描显微镜成像 | 第27-28页 |
| ·荧光光谱分析 | 第28页 |
| ·实验结果 | 第28-37页 |
| ·UV诱导肺腺癌细胞凋亡的研究 | 第28-31页 |
| ·荧光受体漂白技术证实YFP-Bid-CFP质粒的可行性 | 第31-32页 |
| ·实时分析UV诱导的细胞凋亡过程中Bid的激活 | 第32-34页 |
| ·UV诱导的凋亡过程中膜电位的变化 | 第34-36页 |
| ·荧光光谱和Western blot分析Bid的激活 | 第36-37页 |
| ·讨论 | 第37-39页 |
| 第三章 UV诱导的Bax的转位机制的研究 | 第39-55页 |
| ·引言 | 第39页 |
| ·实验仪器 | 第39页 |
| ·实验材料与方法 | 第39-41页 |
| ·实验试剂 | 第39-40页 |
| ·细胞培养和质粒转染 | 第40页 |
| ·激光共聚焦扫描显微镜成像 | 第40-41页 |
| ·实验结果 | 第41-53页 |
| ·Z-IETD-fmk和Pifithrin-a对UV诱导的凋亡的影响 | 第41-43页 |
| ·Z-IETD-fmk和Pifithrin-a对UV诱导的Bax转位的影响 | 第43-46页 |
| ·UV诱导的凋亡过程中Bax和Bid的关系 | 第46-48页 |
| ·利用光受体漂白技术研究UV诱导的凋亡过程中Bax和Bid的关系 | 第48-50页 |
| ·Z-IETD-fmk和Pifithrin-a对UV诱导的caspase-3的激活的影响 | 第50页 |
| ·Bcl-X_L阻止UV诱导的凋亡 | 第50-52页 |
| ·siRNA沉默Bid对UV诱导的凋亡的影响 | 第52-53页 |
| ·讨论 | 第53-55页 |
| 第四章 UV诱导的p53转录依赖和非依赖两条通路的研究 | 第55-62页 |
| ·引言 | 第55-56页 |
| ·实验仪器 | 第56页 |
| ·实验材料与方法 | 第56-57页 |
| ·实验试剂 | 第56页 |
| ·细胞培养和质粒转染 | 第56-57页 |
| ·激光共聚焦扫描显微镜成像 | 第57页 |
| ·实验结果 | 第57-60页 |
| ·Pifithrin-a和CHX分别对UV诱导的凋亡的影响 | 第57-59页 |
| ·实时观察Pifithrin-a和CHX分别对UV诱导的Bax转位的影响 | 第59-60页 |
| ·讨论 | 第60-62页 |
| 第五章 展望 | 第62-63页 |
| 结束语 | 第63-65页 |
| 参考文献 | 第65-70页 |
| 发表论文 | 第70-71页 |
| 致谢 | 第71-72页 |
