黄鳍棘鲷rIL-1β生物学活性检测及血清IgM的纯化
| 摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 缩略语表 | 第9-11页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-22页 |
| 1 细胞因子与IL-1概述 | 第11-15页 |
| ·细胞因子的概念及分类 | 第11-13页 |
| ·IL-1的结构及进化 | 第13-14页 |
| ·IL-1的生理功能 | 第14-15页 |
| 2 鱼类IL-1β的研究进展 | 第15-18页 |
| ·鱼类IL-1β的克隆及序列分析 | 第15-17页 |
| ·鱼类IL-1β的表达及调控 | 第17页 |
| ·鱼类IL-1β功能的研究 | 第17-18页 |
| 3 鱼类IgM的分子结构及分离纯化 | 第18-20页 |
| ·鱼类IgM的分子结构 | 第18-19页 |
| ·鱼类IgM的分离纯化 | 第19-20页 |
| 4 研究的目的意义 | 第20-22页 |
| 第二章 黄鳍棘鲷rIL-1β生物学活性检测 | 第22-50页 |
| 1 材料与方法 | 第22-38页 |
| ·实验动物与菌株 | 第22页 |
| ·实验仪器 | 第22-23页 |
| ·试剂及配制 | 第23-25页 |
| ·rIL-1β的纯化与SDS-PAGE检测 | 第25-28页 |
| ·rIL-1β的鉴定 | 第28-29页 |
| ·纯化蛋白浓度的测定 | 第29-30页 |
| ·纯化蛋白内毒素含量的测定 | 第30-31页 |
| ·头肾白细胞的分离 | 第31-32页 |
| ·β-actin及IL-1β片段的克隆与检测 | 第32-37页 |
| ·RT-PCR检测rIL-1β生物学活性 | 第37-38页 |
| 2 结果 | 第38-47页 |
| ·rIL-1β的SDS-PAGE检测 | 第38页 |
| ·rIL-1β的鉴定 | 第38-39页 |
| ·纯化蛋白的浓度 | 第39页 |
| ·纯化蛋白的内毒素含量 | 第39-40页 |
| ·头肾白细胞的分离 | 第40-41页 |
| ·β-actin及IL-1β克隆检测结果 | 第41-44页 |
| ·rIL-1β生物学活性 | 第44-47页 |
| 3 讨论 | 第47-50页 |
| 第三章 黄鳍棘鲷血清IgM的纯化及兔抗血清的制备 | 第50-63页 |
| 1 材料与方法 | 第50-56页 |
| ·实验动物 | 第50页 |
| ·实验仪器 | 第50页 |
| ·试剂及配制 | 第50-52页 |
| ·黄鳍棘鲷血清IgM的纯化 | 第52-54页 |
| ·血清IgM纯化效果的检测 | 第54页 |
| ·纯化的血清IgM浓度的测定 | 第54页 |
| ·兔抗血清的制备及检测 | 第54-56页 |
| 2 结果 | 第56-60页 |
| ·血清IgM纯化检测 | 第56-58页 |
| ·纯化的血清IgM浓度 | 第58-59页 |
| ·兔抗血清的效价 | 第59-60页 |
| ·兔抗血清的纯度 | 第60页 |
| 3 讨论 | 第60-63页 |
| 参考文献 | 第63-67页 |
| 致谢 | 第67页 |
