| 摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-15页 |
| 引言 | 第15-17页 |
| 1 文献综述 | 第17-33页 |
| ·雌激素受体亚型与相关肿瘤研究进展 | 第17-28页 |
| ·ER的生物学特性 | 第17-19页 |
| ·ERs与乳腺癌 | 第19-21页 |
| ·ERs与子宫内膜癌 | 第21-23页 |
| ·ERs与卵巢癌 | 第23-24页 |
| ·ERs与宫颈癌 | 第24页 |
| ·ERs与前列腺癌 | 第24-25页 |
| ·ERs与大肠癌 | 第25-26页 |
| ·ERs与胃癌 | 第26-27页 |
| ·ERs与其它肿瘤 | 第27-28页 |
| ·胸腺素α原与肿瘤关系的研究进展 | 第28-33页 |
| ·ProTα与肿瘤的关系及可能的作用机制 | 第28-31页 |
| ·ProTα作为肿瘤标记物 | 第31-32页 |
| ·ProTα在肿瘤诊断和治疗中应用前景 | 第32-33页 |
| 2 ERα、ERβ和ProTα在人胃腺癌组织中的表达及其与临床病理的关系 | 第33-48页 |
| ·实验材料 | 第34-36页 |
| ·临床标本 | 第34-35页 |
| ·主要试剂及配制 | 第35-36页 |
| ·主要仪器 | 第36页 |
| ·实验方法 | 第36-39页 |
| ·染色前处理 | 第36-37页 |
| ·免疫组织化学染色 | 第37-38页 |
| ·染色结果判定 | 第38页 |
| ·统计学分析 | 第38-39页 |
| ·实验结果 | 第39-44页 |
| ·ERα蛋白在胃癌中的表达 | 第39页 |
| ·ERβ蛋白在良恶性胃组织中的表达 | 第39-41页 |
| ·ProTα蛋白在良恶性胃组织中的表达 | 第41-42页 |
| ·ERα、ERβ和ProTα蛋白表达与胃腺癌临床病理特征的相关性 | 第42页 |
| ·ERβ和ProTα蛋白表达水平的定量分析及其与胃腺癌临床病理参数的相关性 | 第42-44页 |
| ·讨论 | 第44-47页 |
| ·小结 | 第47-48页 |
| 3 ERα和ERβ mRNA在人胃腺癌中的表达 | 第48-55页 |
| ·实验材料 | 第48-49页 |
| ·人胃癌组织标本 | 第48页 |
| ·主要试剂及配制 | 第48-49页 |
| ·主要仪器 | 第49页 |
| ·实验方法 | 第49-52页 |
| ·提取RNA所用器皿及试剂的预处理 | 第49页 |
| ·标本总RNA的提取及鉴定 | 第49-50页 |
| ·RT-PCR分析ERα和ERβ mRNA | 第50-52页 |
| ·统计学分析 | 第52页 |
| ·实验结果 | 第52-53页 |
| ·ERα和ERβmRNA在胃癌和癌旁组织中的表达 | 第52页 |
| ·ERα和ERβmRNA表达与胃癌病理参数的相关性 | 第52-53页 |
| ·胃癌和癌旁胃粘膜组织中ERα和ERβmRNA的定量分析 | 第53页 |
| ·讨论 | 第53-54页 |
| ·小结 | 第54-55页 |
| 4 17β-雌二醇和三苯氧胺对人胃腺癌细胞的生长和ProTα转录的影响 | 第55-69页 |
| ·实验材料及设备 | 第55-57页 |
| ·细胞系 | 第55页 |
| ·试剂 | 第55-56页 |
| ·溶液配制 | 第56页 |
| ·仪器 | 第56-57页 |
| ·实验方法 | 第57-60页 |
| ·细胞培养条件 | 第57-58页 |
| ·RT-PCR分析ERα和ERβ | 第58-59页 |
| ·ICC检测ERα和ERβ | 第59页 |
| ·E_2和TAM处理和细胞存活率分析 | 第59-60页 |
| ·凋亡细胞的细胞核形态学变化 | 第60页 |
| ·统计学分析 | 第60页 |
| ·实验结果 | 第60-65页 |
| ·ERα和ERβ在SGC-7901和BGC-823细胞表达 | 第60-61页 |
| ·E_2和TAM处理对SGC-7901和BGC-823细胞生长的影响 | 第61-63页 |
| ·E_2和TAM对SGC-7901和BGC-823细胞的形态学观察 | 第63-64页 |
| ·E_2和TAM对BGC-823细胞ProTα mRNA水平的影响 | 第64-65页 |
| ·讨论 | 第65-68页 |
| ·小结 | 第68-69页 |
| 5 反义人ProTα基因转染对胃癌细胞株BGC-823的影响 | 第69-82页 |
| ·实验材料 | 第69-71页 |
| ·细胞系及培养条件 | 第69页 |
| ·主要试剂 | 第69-70页 |
| ·主要仪器 | 第70-71页 |
| ·实验方法 | 第71-75页 |
| ·RT-PCR扩增目的DNA片段 | 第71页 |
| ·PCR产物回收与纯化 | 第71页 |
| ·PCR产物的TA克隆和重组质粒的转化 | 第71-73页 |
| ·DNA序列分析 | 第73页 |
| ·ProTα-AS-ODN转染 | 第73-74页 |
| ·MTT法检测细胞存活率 | 第74页 |
| ·细胞的形态学观察 | 第74页 |
| ·转染细胞中ProTα基因mRNA的半定量检测 | 第74页 |
| ·ICC检测ProTα | 第74-75页 |
| ·统计学分析 | 第75页 |
| ·实验结果 | 第75-79页 |
| ·RT-PCR检测ProTα在BGC-823细胞的表达 | 第75页 |
| ·ProTα-AS-ODN对BGC-823细胞的作用 | 第75-77页 |
| ·RT-PCR方法检测转染组反义ProTα基因的表达 | 第77-78页 |
| ·免疫细胞化学检测ProTα蛋白表达结果 | 第78-79页 |
| ·讨论 | 第79-81页 |
| ·转染方法的选择 | 第79-80页 |
| ·转染细胞的检测 | 第80-81页 |
| ·小结 | 第81-82页 |
| 6 结论与展望 | 第82-85页 |
| ·主要结论 | 第82-83页 |
| ·创新点摘要 | 第83页 |
| ·有待于进一步完成的工作与前景展望 | 第83-85页 |
| 参考文献 | 第85-98页 |
| 附录I 缩略语 | 第98-99页 |
| 附录II 人ProTα基因cDNA测序结果 | 第99-100页 |
| 攻读博士学位期间发表学术论文情况 | 第100-101页 |
| 致谢 | 第101-103页 |
