| 中文摘要 | 第1-4页 |
| 英文摘要 | 第4-8页 |
| 引言 | 第8-16页 |
| 1 植物转座子(transposable element)概述 | 第8-12页 |
| ·转座子的类型和转座机理 | 第8-10页 |
| ·转座子的种类、拷贝数和分布 | 第8页 |
| ·转座子的结构与转座机理 | 第8-10页 |
| ·MITEs(miniature inverted repeat transposable element)类转座子 | 第10-11页 |
| ·MITEs 结构和特点 | 第10页 |
| ·MITEs 分布 | 第10页 |
| ·一个活跃的 MITEs-mPing | 第10-11页 |
| ·Tos17 反转座子 | 第11-12页 |
| ·Tos17 的结构特点 | 第11页 |
| ·Tos17 插入突变在水稻基因组中的电子定位 | 第11-12页 |
| 2 植物体细胞变异(somaclonal variation) | 第12页 |
| 3 植物组织培养过程中的表观遗传学变异 | 第12-14页 |
| ·DNA甲基化变化与植物体细胞无性系变异 | 第12-13页 |
| ·甲基化的研究方法 | 第12页 |
| ·甲基化、超甲基化和去甲基化 | 第12-13页 |
| ·转座子活跃与植物体细胞无性系变异 | 第13-14页 |
| 4 本文研究的目的和意义 | 第14-16页 |
| 材料和方法 | 第16-22页 |
| 1 试验材料 | 第16页 |
| 2 实验方法 | 第16-17页 |
| ·亲本及杂交种的成熟胚诱导与分化 | 第16页 |
| ·植物基因组 DNA 的提取与纯化 | 第16-17页 |
| ·植物基因组 DNA 的提取 | 第16-17页 |
| ·DNA 的纯化 | 第17页 |
| 3 Southern blot 分析 | 第17-19页 |
| ·基因组 DNA 的酶切 | 第17页 |
| ·转膜和杂交 | 第17-19页 |
| ·DNA 样品的处理 | 第17页 |
| ·探针标记(Gene Image random prime labeling module) | 第17-18页 |
| ·杂交 | 第18页 |
| ·信号检测 | 第18-19页 |
| ·杂交信号的去除 | 第19页 |
| 4 目的片断的克隆和测序分析 | 第19-22页 |
| ·PCR 扩增 | 第19页 |
| ·PCR 产物的纯化与克隆 | 第19页 |
| ·感受态细胞的制备、转化及α互补筛选 | 第19-22页 |
| ·大肠杆菌超级感受态细胞的制备 | 第19-20页 |
| ·感受态细胞的转化及α互补筛选 | 第20页 |
| ·阳性克隆的 PCR 检测 | 第20-21页 |
| ·测序 | 第21页 |
| ·序列分析 | 第21-22页 |
| ·序列编辑 | 第21页 |
| ·BLAST | 第21-22页 |
| 结果和分析 | 第22-32页 |
| 1 mPing 在渐渗系中经组织培养后在部分水稻品系里表现活跃 | 第22-26页 |
| ·mPing 探针的制备 | 第22页 |
| ·mPing 在渐渗系中经组织培养后表现活跃 | 第22-23页 |
| ·mPing 在松前于渐渗系杂交种中经组织培养后表现活跃 | 第23-25页 |
| ·mPing 在渐渗系、松前与渐渗系间的杂交种中经组织培养后变异频析 | 第25页 |
| ·mPing 在渐渗系中经组织培养后的 F1 代是否活跃情况分析 | 第25-26页 |
| 2 Tos17 在渐渗系和杂交种中经组织培养后表现活跃 | 第26-30页 |
| ·Tos17 探针的制备 | 第26-27页 |
| ·Tos17 在渐渗系中经组织培养后表现活跃 | 第27-28页 |
| ·Tos17 在松前与渐渗系间的杂交种中经组织培养后表现活跃 | 第28-29页 |
| ·Tos17 在渐渗系、松前与渐渗系间的杂交种中经组织培养后变异频率的分析 | 第29-30页 |
| ·Tos17 在渐渗系中经组织培养后的 F1 代是否活跃情况分析 | 第30页 |
| 3 部分mPing 插入和切离的位点的分析 | 第30-32页 |
| 讨论 | 第32-34页 |
| 结论 | 第34-35页 |
| 参考文献 | 第35-39页 |
| 致谢 | 第39页 |
